Исследование транссудатов и экссудатов мочи

Что такое транссудаты, экссудаты, экскреты и секреты?

Этими терминами обозначены различные жидкости, которые синтезируются в организме человека, но отличаются друг от друга. Транссудат и экссудат – это патологические жидкости, выделяющиеся в естественные полости (плевральную, брюшную, перикардиальную). Между собой они различаются по плотности и количеству содержащихся в них белка и клеток.

Секрет – это результат работы желез наружной секреции, например, слюнных желез. Экскрет – продукт конечного метаболизма, подлежащий удалению из организма (моча).

Для чего нужен цитологический анализ указанных биологических материалов?

В любом транссудате, экссудате, секрете и экскрете содержатся клеточные элементы. Это могут быть железистые и эпителиальные клетки, форменные элементы крови, атипичные клетки опухоли. С помощью изучения этих биологических материалов под микроскопом можно с определенной уверенностью установить причину появления, например, жидкости в плевральной полости или выделений из молочной железы.

Кто направляет на исследование?

Направить на исследование могут врачи многих специальностей: пульмонолог или терапевт – для изучения плеврального экссудата (транссудата), кардиолог – перикардиального экссудата, хирург или гепатолог – жидкости из брюшной полости (при асците). Уролог может направить на цитологическое исследование мочи. Очень востребован этот метод диагностики в практике онколога.

Подготовка к исследованию, и как получают биологический материал

Некоторые биоматериалы пациент собирает сам, например, мочу. Делать это нужно утром после туалета наружных половых органов.

Для получения транссудата или экссудата пациенту выполняют пункцию соответствующей полости (плевральной, брюшной или др.). Под местной анестезией специалист выполняет прокол кожи и вводит специальную иглу в полость. После этого жидкость самотеком или путем активного отсасывания собирают в стерильный контейнер с консервантом. Желательно получить не менее 100 мл жидкости.

Мочу, транссудаты и экссудаты подвергают центрифугированию, чтобы выделить в осадок клетки. Этот осадок наносят на предметное стекло и помещают для изучения под объектив микроскопа.

Препарат из секрета молочной железы готовят следующим образом: к соску подносят сухое предметное стекло, после чего сосок сдавливают и выделившуюся каплю секрета размазывают по стеклу. При скудном отделяемом можно помассировать грудь.

Показания для исследования

Исследование назначают при подозрении на патологический процесс в соответствующем органе: цирроз печени, опухоль в брюшной или плевральной полости, перикардит, рак почек или мочевого пузыря.

Цитологический анализ облегчает дифференциальную диагностику предопухолевых и опухолевых заболеваний. Исследование секрета молочной железы помогает подтвердить или опровергнуть диагноз рака молочной железы.

В заключении врач отражает цитологическую картину, увиденную им в мазке, – какие клетки присутствуют, в каком количестве, наличие среди них атипичных клеток. Цитолог выставляет свой цитологический диагноз в соответствии с международной классификацией с указанием стадии заболевания и степени активности процесса.

Преимущества и недостатки

Цитологическое исследование биологических жидкостей – довольно простой метод диагностики, не требующий дорогостоящего оборудования. Он помогает при первичной диагностике опухолевых заболеваний. Однако его информативность зависит от качества собранного материала, правильности фиксации мазка. Врачи всегда трактуют результаты цитологического исследования в свете клинической картины заболевания. Рекомендуется дополнять его гистологическим исследованием пунктатов и биоптатов.

Информация размещена на сайте только для ознакомления. Обязательно необходима консультация со специалистом.
Если вы нашли ошибку в тексте, некорректный отзыв или неправильную информацию в описании, то просим вас сообщать об этом администратору сайта.

Отзывы размещенные на данном сайте являются личным мнением лиц их написавших. Не занимайтесь самолечением!

источник

В лабораторию доставляют всю полученную жидкость в чистой стеклянной посуде как можно быстрее, во избежание свертывания белка. Материал сопровождают направлением, в котором, помимо паспортных данных, указывают, откуда была получена жидкость, а также предположительный диагноз заболевания. Определяют физико-химические свойства транссудатов и экссудатов, а также проводят микроскопическое и бактериоскопическое исследование. Результаты исследования оформляют в бланке анализа.

Для проведения данных исследований необходимо следующее оснащение рабочего места:

1. Пробирки.
2. Пипетки.
3. Цилиндр на 200 мл.
4. Предметные и покровные стекла.
5. Черная бумага.
6. Секундомер.
7. Набор для окраски по Цилю-Нильсену и Граму.
8. Ледяная уксусная кислота.
9. 50% раствор азотной кислоты.
10. Набор для окраски по Романовскому.

Определение физических свойств транссудатов и экссудатов (количества, цвета, характера, прозрачности, удельного веса) проводят, как при исследовании ликвора.

Выпотную жидкость ввиду наличия в ней большого количества белка сначала разводят водой в 100 раз, а затем определяют количество белка по методу Робертса-Стольникова-Брандберга. Можно также определять белок по методу, усовершенствованному С. Л. Эрлихом и А. Я. Альтгаузеном. При этом исследуемую жидкость первоначально разводят в 64 раза. К 0,1 мл выпотной жидкости прибавляют 6,3 мл воды. (Методику определения белка но методу Робертса-Стольникова-Брандберга и С. Л. Эрлиха и А. Я. Альтгаузена см. в подразделе статьи «Количественное определение белка в моче».)

Для отличия транссудата от экссудата пользуются реакцией Ривальта или Умбера.

В цилиндр емкостью 200-250 мл наливают дистиллированную воду, которую подкисляют несколькими каплями ледяной уксусной кислоты. В смесь вносят 1-2 капли исследуемой жидкости. Если жидкость — транссудат, то помутнения по ходу капли не появляется, и реакцию считают отрицательной; если жидкость — экссудат, то по ходу капли образуется беловатое облачко (напоминает дым от сигары), в этом случае реакцию считают положительной.

Одну каплю хорошо отфильтрованной (до полной прозрачности) исследуемой жидкости помещают на предметное стекло и рядом наносят каплю ледяной уксусной кислоты. Если жидкость — экссудат, то на месте соприкосновения капель получается беловатая полоска, особенно четко видимая на черном фоне. В случае транссудата реакция Умбера отрицательна.

Для определения клеточного состава исследуемой выпотной жидкости проводят микроскопическое изучение нативных и окрашенных препаратов.

Нативные препараты готовят следующим образом: на предметные стекла помещают каплю отцентрифугированного осадка или частицы из свертков или сгустков. Накрывают их покровным стеклом и изучают под микроскопом вначале под малым, а затем под большим увеличением.

Окрашенные мазки готовят из нативных препаратов после их изучения. С этой целью с препаратов снимают покровное стекло, подсушивают мазки на воздухе, фиксируют и окрашивают по Романовскому в течение 3-5 минут, а затем исследуют под микроскопом с иммерсионной системой.

Клеточные элементы, встречающиеся в выпотных жидкостях . При микроскопическом изучении выпотных жидкостей могут быть обнаружены лейкоциты, эритроциты, мезотелий, макрофаги и элементы злокачественных новообразований (рис. 65).

Рис. 65. Клеточный состав транссудатов и экссудатов. 1 — в экссудате, 2 — в транссудате, 3-4 — атипический эпителий в выпотной жидкости.

Морфология нейтрофилов, эозинофилов, лимфоцитов, моноцитов в нативных и окрашенных препаратах практически не отличается от таковой в периферической крови.

Мезотелий — крупные, разной формы клетки с одним или двумя ядрами. В цитоплазме нередко выражена вакуолизация и жировая дистрофия. В окрашенных препаратах цитоплазма мезотелия окрашивается в синий цвет (базофильна).

Макрофаги — клетки обычно крупного размера с одним ядром, цитоплазма их нередко бывает вакуолизирована. В окрашенных препаратах цитоплазма синего цвета (базофильна) и иногда содержит микроорганизмы, обломки эритроцитов, лейкоцитов.

Элементы злокачественных новообразований — в виде полиморфных атипичных клеток, в цитоплазме которых выявляется вакуолизация или жировая дистрофия. Они располагаются отдельно и в виде компактных округлых групп или железистоподобных образований. Некоторые клетки злокачественных новообразований называют перстневидным и они имеют вакуоль, занимающую большую часть цитоплазмы, и ядро, оттесненное к периферии клетки.

Среди тесных групп атипичных клеток обнаруживают известковые образования — псаммозные тельца , которые представляют собой концентрические слоистые образования, располагающиеся в центре округлых групп из атипичных клеток. Их изучают в нативном препарате под малым и большим увеличением микроскопа.

При окраске по Романовскому клетки злокачественного новообразования различной величины и формы. Ядро занимает большую часть цитоплазмы. В ядрах клеток обнаруживают ядрышки.

Цитоплазма атипичных клеток окрашивается базофильно и в ней нередко выявляется жировая дистрофия и вакуолизация.

Для бактериоскопического исследования выпотных жидкостей готовят 2 препарата из осадка, свертков или сгустков. С этой целью материал помещают на предметные стекла, после их подсыхания фиксируют троекратным проведением над пламенем горелки и окрашивают один препарат по Граму, а другой — по Цилю-Нильсену (технику окраски и микроскопирования см. в статье «Бактериоскопическое исследование мокроты»). В окрашенных препаратах могут быть обнаружены стафилококки, стрептококки, диилококки и микооактерии туберкулеза. Отличительные свойства транссудатов и экссудатов приведены ниже.

При изучении жидкости из эхинококкового пузыря в ней определяют физические свойства, белок, янтарную кислоту и проводят микроскопическое исследование.

1. Определение физических свойств — цвета, прозрачности и других — проводится так же, как в ликворе (см. статью «Определение физических свойств ликвора»).
2. Определение белка проводится так же, как в моче (см. тему «Химическое исследование мочи», раздел «Количественное определение белка в моче»).
3. Определение янтарной кислоты. Исследуемую жидкость помещают в фарфоровую чашку и выпаривают до консистенции сиропа. Чашку снимают с нагревательного прибора, дают жидкости остыть и приливают к ней соляную кислоту до получения кислой реакции под контролем лакмусовой бумажки. Затем для извлечения янтарной кислоты приливают смесь Никифорова (эфир, наполовину смешанный с 96° этиловым спиртом). Полученную эфирно-спиртовую вытяжку сливают в химический стаканчик, который устанавливают в водяную баню, и выпаривают. Янтарная кислота выпадает в виде кристаллов.

Структуру полученных кристаллов изучают с помощью микроскопа под малым и большим увеличением. Кристаллы янтарной кислоты имеют вид шестиугольных таблиц или призм.

Готовят нативные препараты. С этой целью жидкость выливают в чашку Петри, а затем с помощью шпателя и иглы на предметное стекло помещают отобранные частицы, добавляют каплю исследуемой жидкости и накрывают покровным стеклом. Приготовленные препараты микроскопируют при малом и большом увеличении. При микроскопическом исследовании обнаруживают крючья паразита, оболочку эхинококкового пузыря и в некоторых случаях сколексы (головки) с двумя венчиками крючьев и четырьмя присосками (см. рис. 59).

Рис. 59. Элементы эхинококка. 1 — пленка эхинококкового пузыря, 2 — крючья эхинококка, 3 — сколексы

источник

Транссудатом называется жидкость невоспалительного про­исхождения, которая образуется вследствие пропотевания сыво­ротки крови через стенку сосудов в больше серозные полости (плевральную, брюшную, околосердечную) чаще при недостаточ­ности кровообращения, а также при нарушении местного крово­обращения.

Экссудат — жидкость, скапливающаяся в тех же полостях в результате воспалительного процесса. Воспалительный выпот наблюдается при туберкулезе, ревматизме, раке и некоторых других заболеваниях.

Определение физических свойств транссудатов и экссудатов

Определяют цвет, прозрачность, консистенцию, запах, удельный вес, характер выпота.

Транссудат и серозный экссудат прозрачны. Транссудат почти бесцветный или имеет бледножёлтый цвет. Серозный экссу­дат имеет различную окраску в зависимости от характера экссу­дата. Экссудат может быть следующего характера:

Серозный — прозрачная жидкость бдедно-желтого цвета.

Серозно-фибринозный — полупрозрачная жидкость, в которой при стоянии выпадает осадок,

Серозно-гнойный — мутная жидкость желтоватого цвета, гной, стоянии отмечается обильный осадок.

Гнойный — густая мутная жидкость желтовато-зеленого цве­та. При примеси крови жидкость приобретает красно-бурый цвет.

Гнилостный — мутная желтовато-зеленая или буро-зеленая жидкость с гнилостным запахом.

Геморрагический — красного или буровато-коричневого цвета мутная жидкость.

Хилёзный — жидкость молочного характера с большим содер­жанием жира.

Псевдохилозный — имеет вид разбавленного молока без аира.

Консистенция выпота может быть жидкой, полужидкой, густой. Запах в большинство случаев отсутствует, неприятным запахом обладает только гнилостный экссудат.

Удельный вес жидкости определяют при помощи урометра. Полостную жидкость наливают в цилиндр, опускают урометр, чтобы он свободно в нем плавал. Транссудаты имеют более низкий удельный вес, чем экссудаты. Удельный вес транссудата колеб­лется в пределах I005-I0I5, удельный вес экссудата выше 1015. Характер выпота определяется путем оценки указанных сеойств с последующей проверкой при микроскопической исследовании.

Сюда относится определение белка. Белок в выпотных жид­костях определяется по методу Робертса-Стольннкова. Метод основан на том, что при наслаивании жидкости, содержащей бе­лок, на 50% раствор азотной кислоты на границе двух жидкостей образуется белое кольцо, причем, если чёткое белое кольцо появляется на 3-ей минуте, то содержание белка разно 0,033% или 33 мг в 1000 мл жидкости.

Появление кольца раньше чем через 2 минуты свидетельству­ет о большом содержании белка в исследуемой жидкости, в этом случае экссудат следует развести физиологическим раствором или водой до появления тонкого белого кольца на 3-ей минуте. При разведении учитывают ширину кольца, его компактность, при этом каждое последущее разведение жидкости готовят из преды­дущего. Определение кольца производят на черном фоне. Количе­ство белка вычисляют, умножив полученное разведение на 0,033%. Содержание белка выражают в %. Белок в транссудате содержит­ся в меньшем количестве, чем в экссудате, не более 3%(обыч­но 0,5-2,55%), а в экссудате свыше 3%:

По количеству белка МОЖНО судить,о характере выпота. Иногда содержание белка в транссудате доходит до 4%. Для отличия транссудата от экссудата в таких случаях пользу­ются реакциями открывающими особое белковое тело, серозомуцин, присущее только экссудатам.

Реакция Ривальта. В цилиндр емкостью 100-200 мл наливают дистиллированную воду, которую подкисляют ледяной уксусной кислотой (2 капли ледяной уксусной кислоты на 100 мл воды). В этот pacтвор опускают 1-2 капли исследуемой жидкости. Если жидкость — транссудат, то помутнения по ходу капли не будет, реакцию считают отрицательной; если жидкость — экссудат, то по ходу капли образуется беловатое облачко, в этом случае реак­цию считают положительной.

Реакция Лукерини. На часовое стекло вносят 2 ил 3% раст­вора перекиси водорода, в нее добавляют I каплю исследуемой Жидкости, если появляется опалесцирующее помутнение, жидкость является экссудатом. Определение помутнения производят на чер­ном фоне.

Для изучения клеточного состава жидкость центрифугируют. Проводят микроскопическое исследование нативных и окрашенных препаратов, приготовленных из осадка.

Нативные препараты готовят следующим образом: на предмет­ное стекло помещают кашпо отцентрифугированного осадка, накры­вают покровным стеклом и изучают под микроскопом вначале под малым, а затем под большим увеличением. При исследовании нативного препарата можно обнаружить: лейкоциты в небольшом количестве обнаруживаются в транссудатах, значительно больше их в экссудатах, особенно большое количество лейкоцитоз отме­чается при гнойных выпотах. Эритроциты в небольшом количестве Встречаются во всяком выпоте, большое количество ИХ наблюдает­ся при геморрагических экссудатах.

Клетки мезотелия — крупные клетки, обнаруживаются в боль­шом количестве в транссудатах, при сердечных и почечных забо­леваниях. Б экссудатах — при злокачественных новообразованиях и туберкулезной этиологии их обычно немного.

Окрашенные препараты. Небольшую каплю осадка помещают на предметное отекло, готовят мазок. Мазок высушивают на воздухе, затем фиксируют или абсолютным метиловым спиртом — 5 минут, или смесью Никифорова (равные объемы 96% этилового спирта и эфира) — 15 минут. Фиксированные препараты окрашивают краской Романовского-Гимза в течение 10 минут, затем смывают краску, мазок высушивают и исследуют под микроскопом с иммерсионной системой. В окрашенных препаратах подсчитывают процентное со­отношение отдельных видов лейкоцитов, исследуют морфологию других клеточных элементов. В окрашенных препаратах можно об­наружить:

нейтрофильные лейкоциты — преобладающие клетки гнойного экссудата. При серозном воспалении нейтрофиллы можно обнару­жить в начальной стадии процесса;

лимфоциты — встречаются в экссудате любой этиологии, в большом количестве наблюдаются при туберкулезках плевритах. Небольшое количество встречается в транссудатах;

клетки мезотелия — крупные, разной формы, с одним или двумя ядрами. Цитоплазма мезотелия окрашивается в синий дает. Постоянно обнаруживаются в транссудатах, в экссудатах — в начальной стадии воспалительного процесса;

атипичные (опухолевые) клетки — различной величины и обычно крупные до 40-50 мкм. Ядро занимает большую часть цитоплазмы. В ядрах клеток обнаруживаются нуклеолы. Цитоплазма окрашивается базофильно.

Сухие фиксированные мазки окрашиваются по Цилю-Нильсону. Методику окрашивания см.раздел «Исследование мокроты».

Для исследования на туберкулезные бактерии экссудат подвергают длительному центрифугированию или обработке способом флотации.

ПРиложение: Посуда, оборудование, реактивы..

I.Пробирки. 2.Пипетки. 3. Цилиндры для определения удельного веса выпотных жидкостей и проведения реакции Ривальта. 4. Часовые стекла для проведения пробы Лукерини. 5. Черная бумага. 6. Урометры. 7. Предметные и покровные стекла. 8. Спиртовые горелки. 9. Центрифуга. 10. Микроскопы. II. Набор для окрашивания по Романовскому-Гимза. 12. Набор для окрашивания по Цилю-Нильсону. 13. Ледяная уксусная кисло­та. 14. 50% раствор азотной кислоты. 15. 3% раствор перекиси водорода.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Для студента самое главное не сдать экзамен, а вовремя вспомнить про него. 9914 — | 7445 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Транссудаты и экссудаты представляют собой выпотные жидкости организма и отличаются между собой способом образования. Так, транссудаты образуются вследствие застойных явлений и не затрагивают оболочку полости, а экссудаты возникают в результате воспалительного процесса с вовлечением в него оболочки. Выпотные жидкости – это жидкость, которая образуется и скапливается в брюшной и плевральной области, а также в полостях суставах и полости перикарда. Исследование экссудатов, транссудатов диагностическое проводится в лабораторных условиях и требует соблюдения определенных условий.

Метод исследования

Современный метод анализа транссудатов и экссудатов заключается в заборе мазков из осадка мочи и биоматериала, полученного путем пункции. В первом случае используется моча, сданная пациентом для проведения общего анализа. Время между сдачей анализа и проведением исследования не должно превышать 2 часов, в противном случае результаты анализа могут быть недостоверными. Следует отметить, что с целью повышения качества диагностики заболевания данное исследование рекомендуется проводить неоднократно.

Для отличия транссудатов от экссудатов используется проба Ривальта, в ходе которой определяется наличие белка, после чего проводятся микроскопическое и бактериологическое исследование. Анализ включает в себя оценку цвета выпотной жидкости, ее консистенции, прозрачности и запаха.

Пункция осуществляется с использованием стерильных материалов и при помощи специальной иглы. Перед проведением прокола применяется местная анестезия с целью исключения болевых ощущений и дискомфорта. Данная процедура безопасна и не имеет побочных эффектов.

Основная задача анализа – определить характер жидкости. По результатам исследования врач имеет возможность подобрать наиболее эффективную схему лечения и назначить необходимые лекарственные препараты.

Показания для исследования

Диагностическое исследование экссудатов и транссудатов целесообразно проводить при подозрении на предраковые и онкологические заболевания, а также для установления диагноза в неясных случаях. В обязательном порядке данный анализ проводится при скоплении жидкости в серозной полости и в случае выявления опухоли в мочевом тракте.

Такого рода диагностика играет важную роль при диагностике таких заболеваний дыхательных путей, как пневмония, туберкулез и эмфизема легких. Основанием для направления пациента на анализ является выявление скопления жидкости в ходе рентгенографического или УЗ исследования. Кроме того, исследование назначается при нарушениях в работе сердечно-сосудистой системы, подозрении на цирроз печени, гепатит и нарушении слуха, вызванного хроническим отитом.

Исследование экссудатов и транссудатов рекомендовано осуществлять перед назначением антибактериальных препаратов, с целью определения чувствительности жидкости к тому или иному препарату.

Подготовка к процедуре и интерпретация результатов

Как правило, проведение анализа не требует специальной подготовки, однако в случае необходимости врач может рекомендовать соблюдение специальной диеты и отказ от приема ряда лекарственных препаратов. В случае постоянного приема каких-либо медикаментов в направлении на исследование обязательно должен быть указан их перечень и дозировка. При заборе мочи для исследования за 1-2 дня до анализа из рациона питания необходимо исключить красящую (свёклу, чернику и пр.), жареную, жирную и острую пищу.

Результат исследования зависит от правильного забора материала, своевременной обработки и качества используемых реагентов и оборудования. Вот почему мы рекомендуем посетить наш диагностический центр в Тольятти, оснащенный по последнему слову техники. Информация результатов не является диагнозом и требует расшифровки врача.

источник

Лабораторный анализ мочи является обязательным при заболеваниях органов мочеотделительной системы, при поражениях других органов, соп­ровождающихся нарушением функции почек, при нарушениях обмена веществ у животных.

Мочу у животных получают несколькими способами: при естественном акте мочеиспускания; посредством катетеризации; при помещении мелких животных в специальные клетки. При этом посуда должна быть чистой и сухой. Лучше всего исследовать свежеполученную (не более 2 ч после взятия) мочу, но если такой возможности нет, то хранят ее в закрытой посуде в холодильнике (не более 36 часов) или консервируют. Для этого используют толуол, тимол (1-2 кристаллика на 100-150 мл мочи), хлоро­форм (1-2 капли на такое же количество). При проведении бактериологи­ческого исследования консервированная моча непригодна.

При лабораторном исследования мочи определяют ее физические свойства (количество, цвет, прозрачность, кон­систенция, запах, относительная плотность), проводят химическое исследование (рН, белок, глюкоза, билирубин, уроби­линоген, кетоновые тела, гемоглобин и кровь) и микроскопию осадка.

Физические свойства мочи зависят от количества и состава корма, внешней температуры, приема воды, физической нагрузки, функции потовых желез, состояния мочеотделительной, сердечно-сосудистой, пищеваритель­ной и других систем организма.

Взрослые животные выделяют в среднем за сутки следующее количест­во мочи: крупный рогатый скот — 6-12 л, лошадь — 3-10 л, мелкий рога­тый скот — 0,5-1,5 л, свинья — 2-4 л, собака 0,2-2 л. Из расстройств диуреза наиболее часто устанавливают олиго- и полиурию. Олигурия (уменьшенное выделение мочи) наблюдается при перикардиальном, диспеп­сическом неонатальном, диарейном, нефротическом синдромах, при синдро­ме дегидратации (эксикозе), синдроме скопления жидкости в плевральной полости, при общей сердечной недостаточности. Полиурия (увеличенное выделение мочи) наблюдается при рассасывании отеков и водянок, при хронической почечной недостаточности.

Цвет мочи зависит от наличия в ней пигментов, ее концентрации и относительной плотности. У здоровых животных цвет варьирует от светло-желтого до буро-желтого (янтарного). Из его изменений наиболее значимым в диагностике является обнаружение краснова­то-бурой мочи в результате появления в ней крови, гемоглобина и его производных. При наличии крови (гематурия) моча становится красной, гемоглобина (гемоглобинурия) – красно-коричневой, метгемоглобина – бурой или даже черной.

У всех животных, за исключением однокопытных, моча прозрачная, без осадка. У лошадей из-за содержания в моче фосфатов и нерастворимых углекислых солей она мутная. Мутная моча у других видов животных указывает на патологичес­кие изменения в почках, мочеточниках, мочевом пузыре. При этом помут­нение происходит за счет наличия различных солей (ураты, оксалаты, фосфаты), слизи, гноя, жира, эпителиальных клеток, форменных элементов крови.

Консистенция мочи у разных видов животных различная. У здоровых крупного рогатого скота, свиней, собак, она водянистая. Слизистой моча становится у них в результате воспаления слизистой оболочки почечной лоханки и мочевого пузыря. У однокопытных моча в норме вязкая и тягу­чая за счет примесей муцина. Жидкой она становится при увеличении диу­реза (полиурии), а также при изменении рН в кислую сторону. Определяют консистенцию посредством переливания мочи из одного сосуда в другой.

Запах мочи специфичен для каждого вида животных и его интенсив­ность зависит от концентрации – чем большая концентрация, тем сильнее запах. Из изменений следует отметить запах ацетона – при кетозе у ко­ров и овец, гнилостный – при соответствующих процессах в мочевых пу­тях. Некоторые лекарственные вещества также могут придать моче соот­ветствующий запах, это скипидар, камфара, валериана и др.

Относительная плотность мочи зависит от количества в ней плотных веществ – прежде всего солей и белка. Плотность мочи определяется пос­редством специального прибора урометра, имеющего шкалу деления от 1,000 до 1,060, и выражается в г/мл или кг/л. У здоровых животных от­носительная плотность мочи следующая: лошадь — 1,025-1,055; крупный рогатый скот — 1,015-1,045; мелкий рогатый скот — 1,015-1,050; свинья — 1,010-1,030; собака — 1,020-1,050. Повышение относительной плотности мочи или гиперстенурию наблюдают при лихорадочном синдроме, олигурии, заболеваниях, сопровождающихся диарейным синдромом, остром диффузном нефрите. Гипостенурию (снижение относительной плотности мочи) регистрируют ча­ще при нефротическом и ацетонемическом синдромах, несахарном диабете, алиментарной дистрофии.

В настоящее время при химическом исследовании мочи все чаще прибегают к экспресс-тестам, которые подразумевают использование диагностических полосок. Их применение позво­ляет исследовать мочу непосредственно в производствен­ных условиях. Однако следует иметь в виду, что для анализа при­годна только неконсервированная, свежеполученная (не позднее 4 ч) моча. Учет результатов проводится по изменению цвета зон индикации в сравнении с эталоном приблизительно через 60 секунд после смачивания полоски мо­чой.

Клиническое значение химического анализа:

рН. У здоровых травоядных животных моча слабощелочная или нейтральная, а у плотоядных – кислая. Смещение рН в кислую сторону наблюдается при лихорадочном и уремическом (почечная недостаточность) синдромах. Щелочная реакция мочи устанавливается при воспалительных процессах в органах мочеотделения, при рассасывании экссудатов и транссудатов.

Белок. В моче здоровых животных белок присутствует в незначи­тельных количествах (до 0,3 г/л). Такая его концентрация не улавлива­ется используемыми экспресс-методиками. Появление белка в моче в кон­центрациях, позволяющих выявить его качественными и полуколичественны­ми пробами называется протеинурией. Протеинурия может быть почечной и внепочечной. Почечная, в свою очередь, подразделяется на органическую и функциональную протеинурию. Органическая возникает при поражении почек в результате повышения проницаемости гломерул, при этом в моче обнаруживаются преимущественно низкомолекулярные белки – альбумины (в связи с высокой диагностической и прогностической значимостью этого теста полосками улавливается в первую очередь альбумин). Его концентрация в моче животных при заболе­ваниях, проявляющихся нефротическим синдромом (нефрит, пиелонефрит), может достигать 10 г/л, а при нефрозе — до 30-50 г/л и выше. Протеину­рия сочетается, как правило, с отеками (отечный синдром). Функциональная почечная протеинурия связана с увеличением прони­цаемости мембран почечного фильтра при сильных раздражениях, замедле­нии тока крови в клубочках и др. (причины — большая физическая нагруз­ка, стресс-факторы). Она временная, не связана с заболеванием, повыше­ние концентрации белка незначительное. При внепочечных протеинуриях белок попадает в мочу из мочевыводя­щих и половых путей в результате примеси воспалительного экссудата, богатого белками. Внепочечная протеинурия не превышает, как правило, 1 г/л.

Глюкоза. В моче здоровых животных содержится минимальное коли­чество глюкозы, которая не определяется обычными тестами. Появление же больших количеств сахара в моче называется глюкозурией, которая может быть физиологической и патологической. Физиологическая наблюдается кратковременно при скармливании большого количества углеводов, стрес­се, у самок перед родами и после них. Патологическая глюкозурия чаще всего бывает диабетической (сахарный диабет), когда наряду с обнаруже­нием сахара возрастает относительная плотность мочи и наблюдается по­лиурия. Кроме этого патологическая глюкозурия наблюдается при пораже­ниях нервной системы (воспаление головного и спинного мозга, травмы, кровоизлияния), при бешенстве, чуме собак, родильном парезе, отравле­нии фосфором, скипидаром, хлороформом, хлоралгидратом. Регистрируется глюкозурия и при опухолях в надпочечниках, гипертиреозе, гиперфункции гипофиза.

Билирубин. Нормальная моча животных билирубина практически не содержит и его обнаружение называется билирубинурия. Его появление в моче связано с повышением концентрации прямого билирубина в крови более 34 мкмоль/л (почками выделяется только прямой билирубин) при за­купорке желчных путей, т.е. механической желтухе, а также при паренхи­матозной желтухе. Следует иметь в виду, что при гемолитической желтухе билирубинемия не развивается, поскольку в крови не накапливается пря­мой билирубин. Т.о. по результатам определения билирубина в моче можно дифференцировать механическую и паренхиматозную желтухи (развивающие­ся при желчекаменной болезни, гепатите, инфекционном энцефаломиелите у лошадей), от гемолитической желтухи, при которой в моче обнаруживают уробилиновые тела или уробилиноген.

Уробилиноген. Это производные билирубина, которые часто назы­ваются уробилиновыми телами и к которым относят уробилиноген, стерко­билиноген, альфа-уробилин. Уробилиноген и уробилин образуются в кишеч­нике из билирубина под действием ферментов, которые вырабатываются микроорганизмами. Часть его в кишечнике превращается в стеркобилин, а часть всасывается в кровь и расщепляется в печени. При поражении печени уробилиноген не полностью перерабатывается гепатоцитами и с током кро­ви переносится в почки, выделяясь с мочою. Такое состояние называется уробилиногенурией. В лабораторной практике нет методов их раздельного определения уробилиновых тел. Она встречается при гемолитической ане­мии, гепатите, циррозе печени, заболеваниях кишечника (воспаление, непроходимость).

Кетоновые тела. Обнаружение в моче кетоновых тел (ацетоуксус­ной кислоты, ацетона, бета-оксимасляной кислоты) называется кетонурия. Ее устанавливают при заболеваниях, проявляющихся ацетонемическим синд­ромом (кетоз, гипогликемия, вторичная остеодистрофия). Предложенные качественные пробы (Лестраде) позволяют установить в моче концентрацию кетоновых тел от 1,7 ммоль/л. Наиболее целесообразно пользоваться ди­агностическими полосками, предложенными для определенного вида живот­ного, т.к. в моче здоровых лошадей их содержится 0,06-0,66 ммоль/л, коров — 0,6-1,1 ммоль/л, овец — 0,59-1,46 ммоль/л.

Кровь и кровяные пигменты в моче здоровых животных не обнару­живаются. Наличие в моче клеток крови (эритроцитов, лейкоцитов) назы­вается гематурия, а кровяных пигментов (гемоглобина, миоглобина, мет­гемоглобина) – гемоглобинурия. Дифференцируют гематурию от гемоглоби­нурии посредством микроскопии (обнаружение клеток крови) или центрифу­гирования (клетки оседают и происходит просветление мочи, пигменты же остаются во взвешенном состоянии). Гематурия – признак поражения почек и мочевыводящих путей, явля­ется ведущим симптомом мочевого синдрома. Визуально кровь в моче обна­руживается (макрогематурия), если количество эритроцитов составляет 25 и более тыс. в мкл. Гемоглобинурия наблюдается при кровепаразитарных заболеваниях, миоглобинурии, отравлении нитратами и нитритами.

Исследование выпотных жидкостей. Жидкости, которые скапливаются в полостях организма, делят на экссудаты и транссудаты в зависимости от их происхождения. Если в их основе лежит воспалительный процесс то это экссудат (серозный, фибринозный, гнойный, гнилостный). Наличие выпота невоспалительного характера, состоящего практически из сыворотки крови, пропотевающей через сосудистую стенку при отечном синдроме или выраженной недостаточности кровообращения, свидетельствует о скоплении транссудата.

Выпотную жидкость получают для исследо­вания посредством прокола или грудной стенки (торакоцентеза), или пробного прокола живота. Его выполняют по всем правилам хирургической техники специальной иглой или троака­ром, которые снабжены краном, чтобы в плевральную полость не попал воздух. Можно воспользоваться и обыкновенной иглой, соединенной со шприцем.

Полученную выпотную жидкость помещают в чистую, су­хую посуду, добавляют стабилизаторы (цитрат натрия — 1 мг/мл, гепарин) и подвергают исследованию. При этом определяют физические свойства (цвет, прозрачность, относительная плотность), проводят химическое исследование (рН, количество белка и глюкозы, проба Ривальты), микроскопию и бактериологическое исследование.

Транссудат представляет собой бесцветную или слегка жел­товатую, прозрачную жидкость, водянистой консистенции, без запаха, слабощелочной реакции. Относительная плотность жидкости колеблется от 1,002 до 1,015 г/мл. Содержание белка в транссудате не превышает 25 г/л (2,5%), глюкозы – более 3 ммоль/л, проба Ривальты отрицательная, осадок незначительный. Транссудаты появляются вследствие следующих причин: изменений со­судистых стенок; повышения капиллярного давления; гидремических изме­нений.

Экссудаты образуются в результате воспалительных процессов. Цвет зависит от типа воспаления, жидкость мутная, вязкая и густая, часто с неприятным гнилостным запахом. Относительная плотность экссудата больше 1,015 г/мл, концентрация белка более 25-30 г/л (2,5-3,0%), глюкозы – менее 3 ммоль/л. Проба Ривальты положительная, обильный осадок, в мазках много лейкоцитов и эритроцитов.

Проба Ривальты используется для экспресс-дифференциации экссудатов от транс­судатов. Принцип основан на том, что экссудаты содержат серомуцин – вещество глобулиновой природы, которое и дает положительную реакцию. Постановка пробы: в цилиндр со 100 мл дистиллированной воды, подкис­ленной 2-3 каплями концентрированной уксусной кислоты, добавляют 1-2 капли исследуемой жидкости. Если образующееся беловатое облачко опус­кается до дна цилиндра – проба положительная (экссудат), если облачко растворяется – отрицательная (транссудат).

Кал в ветеринарной лабораторной практике исследуют по следующей схеме: макроскопическое и микроскопическое исследование; хими­ческий анализ; паразитологическое и бактериологическое исследование.

Макроскопически оценивают количество, консистенцию и форму кало­вых масс, их цвет и запах, а также наличие примесей и остатков непере­варенного корма. Количество кала зависит от съеденного корма, а также от содержания в нем клетчатки. Так, у здорового крупного рогатого ско­та за сутки выделяется от 15 до 35 кг кала, у лошади — 15-20 кг, у мелкого рогатого скота и свиней — 1-3 кг, у собак — 0,2-0,5 кг. Коли­чество кала увеличивается при быстром прохождении пищевой массы через кишечник в результате усиления перистальтики, при нарушении всасыва­ния, при воспалительных процессах. Уменьшение кала наблюдается при за­порах, химо- и копростазе.

Консистенция и форма каловых масс зависит от вида и возраста жи­вотных. При патологических процессах кал может быть плотным, жидким, водянистым или пенистым. Цвет кала зависит, главным образом, от вида принимаемого корма и внешнесекреторной функции печени. Следует также иметь ввиду, что некоторые препараты могут изменять цвет кала (висмут, уголь, препараты железа, метиленовая синь). При нарушении желчеотделе­ния кал приобретает сероватый или глинистый цвет, который хорошо выра­жен у молодняка. При кровотечении в толстом кишечнике кал окрашивается в ярко-красный, вишневый цвет, а при кровотечении в желудке или тонком кишечнике он становится темно-коричневым.

Микроскопическим исследованием устанавливают переваривающую спо­собность органов пищеварения. Отыскивают различные включе­ния, свидетельствующие о патологическом процессе (гной, кровь, клетки эпителия и проч.); наличие различных микроорганизмов; наличие гельмин­тов, паразитирующих в кишечнике и др. органах.

Чтобы оценить переваривающую способность кишечника и др. органов системы готовят три препарата: нативный (не окрашивают, определяют растительный клетки, эпителий, простейших, яйца гельминтов и др.); окрашенный раствором Люголя для обнаружения крахмала (у здоровых жи­вотных крахмал в кале отсутствует и не дает никакой окраски, если крахмал не расщепляется вообще, то окрашивается в сине-черный цвет, частично расщепленный – имеет цвет от фиолетового до красно-бурого); окрашенный раствором Саатгофа, а также реактивом Гехта для обнаружения нейтрального жира (у здоровых животных в кале нейтрального жира прак­тически нет и кал не окрашивается, положительная проба на жир – появ­ление ярко-красного цвета). Стеаторея развивается при недостатке липа­зы и недостаточном поступлении в кишечник желчи, что приводит к маль­дигестии и мальабсорбции. Кал при этом неоформленный, мазевидной кон­систенции.

При химическом исследовании устанавливают рН, наличие в кале скрытой крови, желчных пигментов, белка, а также определяют активность ферментов. Целью бактериологического исследования является обнаружение различных микробов, но поскольку их довольно трудно дифференцировать, то микрофлору окрашивают по Граму. В мазках у здоровых телят обнаружи­вают 60-90% грамположительных и 10-40% грамотрицательных бактерий. При простой, а тем более при токсической диспепсии количество грамотрица­тельной микрофлоры возрастает до 70-90%.

Дата добавления: 2016-11-20 ; просмотров: 369 | Нарушение авторских прав

источник

Транссудаты: (от лат. trans — через, и лат. sudor — пот) — отёчная жидкость, скапливающаяся в полостях тела вследствие нарушения крово- и лимфообращения (например, брюшная водянка — асцит — при сердечной недостаточности или циррозе печени). Образование транссудата происходит без воспалительных изменений тканей, что отличает его от выпота.

Транссудат, невоспалительный выпот — результат пропотевания сыворотки крови; скапливается в полостях и тканях тела при нарушениях кровообращения, водно-солевого обмена, повышении проницаемости стенок капилляров и венул. От воспалительного выпота (экссудата) отличается главным образом низким содержанием белка (не более 2 %; плохо связывается белковыми коллоидами).При взятии транссудата на анализ проводят санацию места предполагаемого прокола и пункцию плевральной, перикардиальной, брюшной полости. Всю полученную из серозных полостей жидкость (не более 1 литра) помещают в ёмкость с притёртой или плотно закручивающейся крышкой, и доставляют в лабораторию в день взятия, чтобы не разрушились клеточные элементы.

Экссуддаты, секреты, экскреты: Экссудат — мутная, богатая белком и клетками гематогенной и гистогенной природы жидкость, которая пропотевает из мелких кровеносных сосудов в месте воспаления. Содержит белок, лейкоциты, эритроциты, минеральные вещества, клеточные элементы, часто — микробы, вызвавшие воспалительный процесс, и поэтому служит материалом для микробиологической диагностики. Секрет — жидкость, выделяемая клетками и содержащая биологически активные вещества. Секреты выделяются железами. Экскреты — продукты выделения клеток железистого эпителия, которые, являясь для организма ненужными или даже вредными веществами (напр. пот и моча), выводятся наружу при помощи органов выделения. Для проведения анализа биоматериал собирают в стерильный контейнер и доставляют в лабораторию в день взятия, чтобы не разрушились клеточные элементы.

Моча: для сбора мочи используется набор для общего анализа мочи (контейнер со встроенным держателем, 2 вакуумные пробирки с консервантом, инструкция). В контейнер собирают утреннюю порцию мочи. Из контейнера биологический материал переносят с помощью встроенного держателя в обе пробирки по очереди. Пробирки доставляют в лабораторию. Если набора для общего анализа мочи пациенту получить заранее не удалось по объективным причинам, то утренняя порция мочи собирается пациентом в стерильную ёмкость с плотно закрывающейся крышкой. Ёмкость должна быть доставлена в лабораторию строго в течение 2 часов с момента взятия! В этом случае перенос биоматериала в пробирки с консервантом осуществляется сотрудником лабопатории. В лабораторию для исследования должны быть доставлены обе маркированные пробирки. Для повышения качества диагностики исследование целесообразно проводить три раза.

Выделения из молочной железы: отпечатки сцернирующей молочной железы получают путём прикладывания сухого, обезжиренного предметного стекла к нужному соску; при скудных выделениях для получения биологического материала делают массажные движения по молочной железе в сторону соска. Мазки готовят из первой и последующих капель. Первая капля, как правило, содержит наибольшее количество клеточных элементов. Полученный биологический материал наносят тонким, равномерным слоем на центральную часть предметного стекла. Биоматериал на стёклах находится на воздухе до полного высыхания. Стекла аккуратно маркируют и отправляют на исследование в лабораторию.

Материал для исследования:

1. мазки, приготовленные в лаборатории, из осадка транссудатов, экссудатов, секретов, экскретов и мочи;
2. мазки, приготовленные из отпечатков сцернирующей молочной железы.

Условия подготовки определяются лечащим врачом.

Направительный бланк на цитологическое исследование

• Жидкость в серозной полости.
• Сцернирующая молочная железа.
• Опухоль в мочевом тракте.
• Подтверждение, уточнение клинического диагноза.
• Установление диагноза в неясных случаях.
• Диагностика неопухолевых, предопухолевых и опухолевых заболеваний.

Результат цитологического исследования зависит от адекватности и качества полученного материала, правильной фиксации материала, правильности и полноты предоставленной информации о пациенте. При отсутствии клинической информации, данных анамнеза и описания материала невозможно дать точное и адекватное клинической картине цитологическое заключение о патологическом процессе.

Форма цитологического заключения: описание общей цитологической картины, сопоставление цитологических данных с клиническими данными о пациенте с определением характера патологического процесса согласно современным классификациям, и, при необходимости, с указанием степени активности, этиологии заболевания.

Управление подпиской | Правила подписки(*) Доступ платный и составляет 74,51 руб. c НДС (для абонентов МТС) сроком на 6 дней и 20 руб. с НДС (для абонентов Билайн) сроком на 1 дней. Продление доступа происходит автоматически, посредством подписки. Для остановки подписки отправьте SMS с текстом СТОП533 – для абонентов МТС на номер 770785 (бесплатно),для абонентов Билайн СТОП на 9101 (бесплатно). Справки по телефону 8-800-555-5638 (звонок бесплатный).

источник

Что такое клинические исследования и зачем они нужны? Это исследования, в которых принимают участие люди (добровольцы) и в ходе которых учёные выясняют, является ли новый препарат, способ лечения или медицинский прибор более эффективным и безопасным для здоровья человека, чем уже существующие.

Главная цель клинического исследования — найти лучший способ профилактики, диагностики и лечения того или иного заболевания. Проводить клинические исследования необходимо, чтобы развивать медицину, повышать качество жизни людей и чтобы новое лечение стало доступным для каждого человека.

У каждого исследования бывает четыре этапа (фазы):

I фаза — исследователи впервые тестируют препарат или метод лечения с участием небольшой группы людей (20—80 человек). Цель этого этапа — узнать, насколько препарат или способ лечения безопасен, и выявить побочные эффекты. На этом этапе могут участвуют как здоровые люди, так и люди с подходящим заболеванием. Чтобы приступить к I фазе клинического исследования, учёные несколько лет проводили сотни других тестов, в том числе на безопасность, с участием лабораторных животных, чей обмен веществ максимально приближен к человеческому;

II фаза — исследователи назначают препарат или метод лечения большей группе людей (100—300 человек), чтобы определить его эффективность и продолжать изучать безопасность. На этом этапе участвуют люди с подходящим заболеванием;

III фаза — исследователи предоставляют препарат или метод лечения значительным группам людей (1000—3000 человек), чтобы подтвердить его эффективность, сравнить с золотым стандартом (или плацебо) и собрать дополнительную информацию, которая позволит его безопасно использовать. Иногда на этом этапе выявляют другие, редко возникающие побочные эффекты. Здесь также участвуют люди с подходящим заболеванием. Если III фаза проходит успешно, препарат регистрируют в Минздраве и врачи получают возможность назначать его;

IV фаза — исследователи продолжают отслеживать информацию о безопасности, эффективности, побочных эффектах и оптимальном использовании препарата после того, как его зарегистрировали и он стал доступен всем пациентам.

Считается, что наиболее точные результаты дает метод исследования, когда ни врач, ни участник не знают, какой препарат — новый или существующий — принимает пациент. Такое исследование называют «двойным слепым». Так делают, чтобы врачи интуитивно не влияли на распределение пациентов. Если о препарате не знает только участник, исследование называется «простым слепым».

Чтобы провести клиническое исследование (особенно это касается «слепого» исследования), врачи могут использовать такой приём, как рандомизация — случайное распределение участников исследования по группам (новый препарат и существующий или плацебо). Такой метод необходим, что минимизировать субъективность при распределении пациентов. Поэтому обычно эту процедуру проводят с помощью специальной компьютерной программы.

• бесплатный доступ к новым методам лечения прежде, чем они начнут широко применяться;
• качественный уход, который, как правило, значительно превосходит тот, что доступен в рутинной практике;
• участие в развитии медицины и поиске новых эффективных методов лечения, что может оказаться полезным не только для вас, но и для других пациентов, среди которых могут оказаться члены семьи;
• иногда врачи продолжают наблюдать и оказывать помощь и после окончания исследования.

• новый препарат или метод лечения не всегда лучше, чем уже существующий;
• даже если новый препарат или метод лечения эффективен для других участников, он может не подойти лично вам;
• новый препарат или метод лечения может иметь неожиданные побочные эффекты.

Главные отличия клинических исследований от некоторых других научных методов: добровольность и безопасность. Люди самостоятельно (в отличие от кроликов) решают вопрос об участии. Каждый потенциальный участник узнаёт о процессе клинического исследования во всех подробностях из информационного листка — документа, который описывает задачи, методологию, процедуры и другие детали исследования. Более того, в любой момент можно отказаться от участия в исследовании, вне зависимости от причин.

Обычно участники клинических исследований защищены лучше, чем обычные пациенты. Побочные эффекты могут проявиться и во время исследования, и во время стандартного лечения. Но в первом случае человек получает дополнительную страховку и, как правило, более качественные процедуры, чем в обычной практике.

Клинические исследования — это далеко не первые тестирования нового препарата или метода лечения. Перед ними идёт этап серьёзных доклинических, лабораторных испытаний. Средства, которые успешно его прошли, то есть показали высокую эффективность и безопасность, идут дальше — на проверку к людям. Но и это не всё.

Сначала компания должна пройти этическую экспертизу и получить разрешение Минздрава РФ на проведение клинических исследований. Комитет по этике — куда входят независимые эксперты — проверяет, соответствует ли протокол исследования этическим нормам, выясняет, достаточно ли защищены участники исследования, оценивает квалификацию врачей, которые будут его проводить. Во время самого исследования состояние здоровья пациентов тщательно контролируют врачи, и если оно ухудшится, человек прекратит своё участие, и ему окажут медицинскую помощь. Несмотря на важность исследований для развития медицины и поиска эффективных средств для лечения заболеваний, для врачей и организаторов состояние и безопасность пациентов — самое важное.

Потому что проверить его эффективность и безопасность по-другому, увы, нельзя. Моделирование и исследования на животных не дают полную информацию: например, препарат может влиять на животное и человека по-разному. Все использующиеся научные методы, доклинические испытания и клинические исследования направлены на то, чтобы выявить самый эффективный и самый безопасный препарат или метод. И почти все лекарства, которыми люди пользуются, особенно в течение последних 20 лет, прошли точно такие же клинические исследования.

Если человек страдает серьёзным, например, онкологическим, заболеванием, он может попасть в группу плацебо только если на момент исследования нет других, уже доказавших свою эффективность препаратов или методов лечения. При этом нет уверенности в том, что новый препарат окажется лучше и безопаснее плацебо.

Согласно Хельсинской декларации, организаторы исследований должны предпринять максимум усилий, чтобы избежать использования плацебо. Несмотря на то что сравнение нового препарата с плацебо считается одним из самых действенных и самых быстрых способов доказать эффективность первого, учёные прибегают к плацебо только в двух случаях, когда: нет другого стандартного препарата или метода лечения с уже доказанной эффективностью; есть научно обоснованные причины применения плацебо. При этом здоровье человека в обеих ситуациях не должно подвергаться риску. И перед стартом клинического исследования каждого участника проинформируют об использовании плацебо.

Обычно оплачивают участие в I фазе исследований — и только здоровым людям. Очевидно, что они не заинтересованы в новом препарате с точки зрения улучшения своего здоровья, поэтому деньги становятся для них неплохой мотивацией. Участие во II и III фазах клинического исследования не оплачивают — так делают, чтобы в этом случае деньги как раз не были мотивацией, чтобы человек смог трезво оценить всю возможную пользу и риски, связанные с участием в клиническом исследовании. Но иногда организаторы клинических исследований покрывают расходы на дорогу.

Если вы решили принять участие в исследовании, обсудите это со своим лечащим врачом. Он может рассказать, как правильно выбрать исследование и на что обратить внимание, или даже подскажет конкретное исследование.

Клинические исследования, одобренные на проведение, можно найти в реестре Минздрава РФ и на международном информационном ресурсе www.clinicaltrials.gov.

Обращайте внимание на международные многоцентровые исследования — это исследования, в ходе которых препарат тестируют не только в России, но и в других странах. Они проводятся в соответствии с международными стандартами и единым для всех протоколом.

После того как вы нашли подходящее клиническое исследование и связались с его организатором, прочитайте информационный листок и не стесняйтесь задавать вопросы. Например, вы можете спросить, какая цель у исследования, кто является спонсором исследования, какие лекарства или приборы будут задействованы, являются ли какие-либо процедуры болезненными, какие есть возможные риски и побочные эффекты, как это испытание повлияет на вашу повседневную жизнь, как долго будет длиться исследование, кто будет следить за вашим состоянием. По ходу общения вы поймёте, сможете ли довериться этим людям.

Если остались вопросы — спрашивайте в комментариях.

источник

Показания к исследованию экссудатов и транссудатов
Производство пробных проколов с диагностической целью в настоящее время имеет место главным образом при плевральных выпотах. Тем не менее возможность исследования выпота и из брюшной полости и из околосердечной сумки может встретиться нередко в результате прокола или разреза, предпринимаемого с лечебной целью.

Что касается экссудата в полости плевры, то здесь пункция производится у большинства больных, относительно которых возникает подозрение на наличие выпота, ибо исследование выпотной жидкости может дать ценные диагностические указания. С другой стороны, отсутствие жидкости при проколе в случаях, где предполагалось ее наличие, также имеет важное значение.

Техника производства прокола плевры
Для производства прокола плевры применяется 10-граммовый шприц Record и игла длиной около 10 см, достаточно толстая, безукоризненно острая. Выбор места — в зависимости от особенностей случая.

Прокол производится следующим образом. Больной сидит на койке или на столе в перевязочной (чтобы после пункции его можно было сразу уложить, если понадобится). Руки рекомендуется положить на голову, так как при этом получается расширение межреберных промежутков. Определяется место прокола — там, где больше всего выражена тупость и отсутствует дыхание. Обычно пункция производится в VIII или IX межреберье между linea axillaris posterior и linea scapularis. Намеченный участок смазывается йодом. Игла надевается на шприц. Прокол делается в межреберье над верхним краем нижележащего ребра (во избежание повреждения сосудистого пучка, располагающегося по нижнему краю ребра). При прохождении иглы в полость плевры получается своеобразное ощущение, как будто игла после известного напряжения попала в свободное пространство. Нередко исследующий чувствует, что игла довольно долго, с трудом, проталкивается через плотный слой; это ощущение характерно для плевритов, сопровождающихся образованием толстых отложений фибрина и утолщением плевры (так называемые шварты). Полученный экссудат собирается в цилиндр или стакан, а та часть его, которая предназначается для бактериологического исследования, отливается в стерильную пробирку.

План исследования экссудатов и транссудатов
Прежде всего определяются свойства жидкости, обнаруживаемые путем простого осмотра: цвет, прозрачность, консистенция, запах. Затем следует физико-химическое исследование, сводящееся к определению удельного веса, количества белка и к производству специальной «пробы Ривальта». Затем производится имеющее важное значение микроскопическое исследование. Гнойные экссудаты следует подвергнуть бактериоскопическому исследованию (в серозных выпотах отыскивание микроорганизмов под микроскопом оказывается, как правило, безуспешным). В большинстве случаев далее производится бактериологическое исследование путем посева на среды. В особых случаях для установления или исключения туберкулезной инфекции проделывается заражение животных (морских свинок).

Определение общих свойств экссудатов и транссудатов
Цвет жидкости меняется в зависимости от характера выпота и может быть бледно-желтым, зеленоватым, буроватым, буровато-красным, молочно-белым и т. д.

Прозрачность также зависит от характера выпота, т. е. от количества взвешенных в нем форменных элементов. При стоянии в серозных экссудатах появляется сгусток фибрина — в зависимости от количества его то в виде легкого облачка, то — паутинки, то, наконец, большого студенистого свертка, в который может превращаться весь выпущенный выпот.

Консистенция выпота может быть жидкой, полужидкой, густой, студенистой — опять-таки в зависимости от характера его.

Запах в большинстве случаев отсутствует, иногда же встречается гнилостный сероводородный запах, обусловленный присутствием Bact. coll.

Характер выпота определяется путем оценки указанных выше свойств с последующей проверкой при микроскопическом исследовании. По своему характеру экссудаты делятся на: 1) серозные (вернее — серо-фибринозные), главной составной частью которых является сыворотка крови, 2) серозно-гнойные, 3) гнойные, 4) гнилостные, 5) геморрагические, 6) хилезные и хилюсоподобные беловатые, молочновидные экссудаты; хилезные экссудаты получаются вследствие излияния в плевральную полость лимфы при нарушении целости грудного протока; при отстаивании их на поверхности образуется сливкоподобный слой; развитие хилюсоподобных экссудатов зависит от жирового перерождения находящихся в нем форменных элементов.

Физико-химическое исследование экссудатов и транссудатов
Определение удельного веса имеет существенное значение, так как является одним из способов отличить экссудат от транссудата. Удельный вес транссудата колеблется в пределах 1005-1015, тогда как удельный вес экссудатов выше 1015 (обычно выше 1018). Определение производится ареометрическим путем, обычно при помощи урометров. Этот способ требует значительного количества жидкости, которого может иногда не оказаться. В таких случаях можно пользоваться способом Детре (Detre), для которого достаточно 0,5-1,0 см3 жидкости.

Способ основан на том принципе, что капля исследуемой жидкости, опущенная в раствор более легкого удельного веса, опустится в нем на дно, в более концентрированном растворе всплывет и, наконец, в равном по концентрации растворе будет плавать в глубине его. Для определения удельного веса по этому методу в ряд пробирок наливаются растворы поваренной соли различной крепости. Исследуемая жидкость подкрашивается одной каплей метиленовой синьки и набирается в капиллярную пипетку. Затем, держа кончик пипетки по возможности близко к уровню раствора, спускают по одной капле в каждую из пробирок. При этом окажется, что в одних пробирках капля погрузится на дно, в других — всплывет, в равном по концентрации растворе будет плавать, не подымаясь и не опускаясь. Удельный вес раствора поваренной соли в этой пробирке укажет на удельный вес исследуемой жидкости.

Определение количества белка должно производиться во всех случаях, так как оно способствует определению характера полученного выпота: в экссудатах, жидкостях воспалительного характера, белка содержится больше, чем в транссудатах. Обычно считают, что жидкость, содержащая больше 2,5% белка, должна быть сочтена за экссудат, меньше 2,5%-за транссудат. Однако необходимо помнить, что этот диагностический признак не может считаться абсолютным: в некоторых случаях в транссудатах белка встречается до 4%, а с другой стороны заведомые экссудаты содержат иногда белка меньше 2,5%.

Определение производится так же, как и в моче, по способу Роберте-Стольникова или по способу Эсбаха (см. стр. 485). Обычно пользуются последним; при этом исследуемый выпот должен быть разведен предварительно в 10 раз, так как альбуминометр Эсбаха рассчитан на очень малое содержание белка (в промилле, а не в процентах).

Проба Ривальта ( Rivalta ). Выше упоминалось, что по количеству белка еще нельзя судить о природе выпота. Существенную помощь в этом отношении может оказать реакция, открывающая особое белковое тело, присущее только экссудатам, так называемый серозомуцин. Реакция основана на том, что белковое тело выпадает из раствора в уксусной кислоте. Методика состоит в следующем. В прозрачный более или менее высокий сосуд (цилиндр) наливается очень слабый раствор уксусной кислоты (2 капли крепкой уксусной кислоты на 100 см3 воды). Затем в этот раствор опускается по каплям исследуемая жидкость. Если падающие капли целиком растворяются в уксусной кислоте, исследуемая жидкость является транссудатом; если же они оставляют на своем пути ясный белый след в виде облачка, жидкость содержит серозомуцин, выпадающий из раствора, и должна была сочтена за экссудат.

Микроскопическое исследование экссудагов и транссудатов
Для изучения клеточного состава полученной жидкости она подвергается центрифугированию. Для первого препарата капля осадка берется на предметное стекло, накрывается покровным и рассматривается под малым и большим увеличениями. Уже при таком ориентировочном исследовании можно установить наличие тех или иных форменных элементов и их количество. Однако диференцировать различные виды лейкоцитов при этом трудно, поэтому приготовляют второй окрашенный препарат. Для этого капля осадка размазывается равномерно на предметном стекле, высушивается на воздухе, фиксируется метиловым спиртом или смесью спирта с эфиром и окрашивается той или иной кровяной краской — чаще всего Романовского — Гимза — в течение 15-20 минут. Такой препарат рассматривается под иммерсионной системой, которая обеспечивает возможность детального изучения клеток.

Изучение клеточного состава выпота — цитодиагностика — имеет серьезное диагностическое значение.

Эритроциты в небольшом количестве встречаются во всяком выпоте. Значительная часть их может быть отнесена за счет травмы, которая наносится при проколе. Характерно для эритроцитов такого происхождения расположение их в виде монетных столбиков. Большое количество эритроцитов наблюдается при геморрагических выпотах (цинга purpura, новообразования, haematothorax на почве травмы).

Лимфоциты в большом количестве наблюдаются при туберкулезных плевритах; нередко они занимают под микроскопом чуть не сплошь все поля зрения, резко преобладая над другими клеточными элементами. Они же наблюдаются при плевритах другой этиологии в периоде выздоровления. Небольшое количество их встречается и в транссудатах.

Нейтрофилы характерны для нетуберкулезных плевритов, при которых в разгаре заболевания они резко преобладают над другими видами клеток. Но и в начальном периоде туберкулезных плевритов они могут встречаться в большом количестве, лишь позднее, к 7-10-му дню, уступая место лимфоцитам.

Эндотелиальные клетки иногда в огромном количестве содержатся в жидкостях невоспалительного характера — транссудатах, в которых располагаются часто целыми пластами по 8-10 клеток. В экссудатах обычно их немного. Изредка в экссудатах, обусловленных новообразованием, можно встретить огромные клетки с множественными вакуолями в протоплазме, иногда жирно перерожденные с одним или несколькими ядрами, в которых хорошо заметны 2-3 ядрышка. Эти клетки характерны для злокачественных новообразований, но далеко не всегда встречаются при них.

Бактериологическое исследование экссудатов и транссудатов
Бактериоскопия . В серозных экссудатах туберкулезного происхождения бактериоскопически обнаружить туберкулезную палочку можно крайне редко. Поэтому бактериоскопическое их исследование не имеет значения. Экссудаты же при острых кокковых плевритах, особенно гнойные, обязательно окрашиваются по Граму и исследуются под микроскопом в поисках возбудителя.

Посев . Почти все пунктаты обычно исследуются бактериологическим путем посева на соответствующие среды. Производятся посевы на туберкулезную палочку и на обычные возбудители воспаления, из которых чаще всего встречаются стрептококки, стафилококки, диплококки. По отношению к серо-фибринозным экссудатам необходимо помнить, что посев должен быть произведен по возможности скоро, пока не успел образоваться сгусток фибрина, который может увлечь за собой туберкулезные палочки. Результаты посева на туберкулезную палочку определяются только через 1-3 месяца.
Заражение животных. В случаях, где необходимо точное установление туберкулезной этиологии заболевания, при отрицательных данных бактериоскопического исследования и посева производится заражение морских свинок. Результат заражения может быть установлен через длительный срок (от 3 недель до нескольких месяцев).

источник