Мочу собирают в стерильную пробирку с пробкой для следующего исследования

На показатели представленной для анализа мочи влияет состояние емкости, в которую она собрана. Минимальный жировой налет либо остатки моющего средства, способны показать присутствие белка либо явиться причинами иных отклонений от нормальных значений.

Для избежания этого следует правильно подбирать и готовить контейнеры для сдачи анализов.

Доктор выдает больному контейнер и поясняет правила отбора урины. Можно такие емкости приобрести в аптечном киоске. Урина может быть собрана в разное время суток, если врачом не указаны иные варианты. Действия совершаются в следующей последовательности:

Необходимо хорошо отмыть руки.
Материал собирается в стерильную емкость.
На контейнере указываются даты рождения и отбора анализа, личные данные.
Контейнер герметично закрывается и помещается в прохладное место, если возникает задержка в передаче.
Совершить иные действия, если их даст доктор.

Моча на исследование может быть взята у пациентов любых возрастных категорий, имеющих неодинаковый объем мочевика. Ведь нелогично урину грудничка приносить в таре большого размера. При этом существуют анализы, требующие предоставления всего суточного количества урины, собранной в общую емкость или в различные баночки.

По этой причине контейнер под анализ должен иметь объем, в любом определенном случае являющийся наиболее оптимальным. С этой целью изобретены стаканчики, пробирки, мешочки и контейнеры различной емкости – от пятнадцати миллилитров до трех литров. О необходимых анализах при цистите можно узнать из нашего материала.

В момент отбора и перевозки урина не должна подвергаться реакциям химического типа, способным произойти в результате взаимодействия с материалом тары, иметь контакт с окружающей средой. Такие процессы могут оказать неблагоприятное влияние на качественное состояние мочи и, как следствие, стать причиной неправильно поставленного диагноза. По этой причине к таре для сбора урины предъявляется ряд требований:

Нейтральность к химсоставам и отменный уровень прочности. Материал тары не должен реагировать с уриной любого уровня кислотности и не нести в себе примесей. По этой причине тару для отбора мочи изготавливают из особого пластикового материала, способного выдержать понижение температурного режима и механического воздействия.
Герметичная крышка. Она не позволит содержимому контактировать с окружающей ее средой.
Стерильность. Чистая емкость гарантирует, что в мочу не попадут посторонние примеси и не станут причиной искажения показателей анализов. Стерилизацию емкостей выполняют в специальных автоклавах.
Устойчивость дна. Данное условие обязательно, чтобы случайно не расплескать материал.
Наличие этикетки. Позволяет написать необходимые данные о пациенте.
Градуировка рельефного типа.
Полная готовность к применению, простая и легкая эксплуатация для людей любой возрастной категории и разных физических способностей.

Урина отличается большой диагностической пользой, по этой причине есть достаточное количество исследований. Чтобы данные были достоверными, медиками разработаны разнообразные конструкции и виды емкостей, контейнеров и мешков для отбора мочи.

Всю тару, используемую для сбора мочи, распределяют на несколько групп.

Чаще всего используются стаканы с крышками, считающиеся наиболее удобными в сборе и хранении анализов. Они стерильны, упакованы в прозрачный материал, имеют градуировку и панель для внесения данных. Такие стаканчики могут использовать не только взрослые пациенты, но и дети. Они отлично подходят для сбора среднего количества урины, крышка закрывается плотно.

Емкость, имеющая такое устройство, отлично подходит в случае, когда предстоит бесконтактный забор отобранной на анализ мочи из стаканчика в пробирку. Механизм располагается в крышке, представляя собой гнездо для пробирки. Перемещение урины из стакана происходит под воздействием создаваемого давления.

Они изготовлены из пластикового материла, обеспечены крышками из резины, удобно прокалывающимися иголкой. В ряде случаев могут потребоваться банки с пробирками, содержащие в себе консервант в виде борной кислоты.

С ее помощью моча сохраняется при длительном хранении или в летний сезон. Консервант препятствует размножению вредных микроорганизмов.

Данная группа емкостей должна отличаться большей вместимостью, по этой причине ее производят объемом от двух с половиной до трех литров. Контейнер может иметь формы банки либо канистры, закрывается пробкой и плотно завинчивающейся крышкой.

Дно такой тары отличается устойчивостью, есть ручка для удобства переноски. Для изготовления используется нейтральный к химическим реакциям пластик, способный противостоять повреждениям механического характера. На одном из боков расположено бумажное поле, на котором делаются необходимые записи.

Их отличает разнообразие моделей. Мешки применяются не только для доставки собранной мочи. С их помощью удобно собирать мочу у людей, страдающих разными расстройствами дизурического характера, или не способных самостоятельно передвигаться. Мешки бывают прикроватными, чтобы собирать мочу у лежачего больного и обеспечивать санитарно-гигиенические требования.

Имеются приспособления, которые носятся больными, страдающими недержанием. Они выглядят в виде маленьких сумок, крепятся на бедро или на голень, не сковывают движения, имеют возможность постоянно опорожняться.

Мешочек, в который собирается детская моча, считается одноразовым. Его конструкции отличаются и могут использоваться либо для мальчиков, либо для девочек.

Существуют и универсальные модели. Приклеиваемый к детской коже пояс не вызывает аллергенных проявлений. Как только закончено испускание мочи, урину можно перелить в стерильную тару либо контейнер из пластика и отнести в лабораторию.

Он предназначается для отбора и перевозки с целью сдачи анализа общеклинического характера кала и иных материалов биологического происхождения. Изготавливается емкость из сверхчистого пластика, считающегося устойчивым к химическим реакциям, воздействиям механического характера.

Применение данного типа тары минимизирует проникновение в пробы посторонних элементов, существенно продлевает срок, при котором проведение анализа остается качественным.

В производственном процессе создается высокий температурный режим, достигающий двухсот пятидесяти градусов, все операции по изготовлению происходят в автоматическом режиме. Это надежно гарантирует, что внутри контейнеров не будет посторонних предметов.

Контейнер снабжается герметичной крышкой, способной плотно завинчиваться. В ней встроена специальная лопатка, при помощи которой удобно отбирать кал на анализ. На стенке емкости имеется бумажная полоска, на которой пишутся все необходимые данные.

Если под сдаваемый анализ нет необходимости использовать стерильную тару, разрешается применение домашней посуды. Банка для урины должна быть подвергнута хорошей обработке, чтобы полностью отвечать предъявляемым к ней требованиям. Тара должна быть изготовлена из стекла, иметь объем от ста пятидесяти миллилитров, вымыта, просушена и обеспечена плотной крышечкой.

В качестве дополнительной меры емкость и крышку можно обработать кипятком, чтобы удалить с внутренних стенок оставшийся на них жир. Если тара подготовлена плохо, то во время исследования может быть выявлено повышенное содержание в моче белка. Чтобы не допустить этого, банку тщательно готовят.

Необходимо также помнить, что переливание урины из одной емкости в другую категорически запрещено.

У маленьких детей испускание мочи происходит по пятнадцать – двадцать раз в течение суток. Чтобы собрать урину на анализ, необходимо выполнить следующие процедуры:

Вымыть руки с мылом или иным средством для обеззараживания.
Приготовить емкость – банку, контейнер, мешочек.
Выполнить гигиенические мероприятия (вымыть теплой водичкой и насухо протереть) на половых органах детей.
Посадить раздетого малыша на колени, и, как только начнется спонтанное испускание мочи, собрать образцы в середине процесса.

Рекомендуется воспользоваться специальными коллекторами для детей, продающимися в аптечных киосках. Если ребенок в течение тридцати минут не испустил мочу, необходимо осторожно снять пакет, повторно провести гигиенические мероприятия, чтобы исключить загрязнение мочи, установить новый коллектор. Успешно собрав урину, ее осторожно переливают в контейнер. Образец перед сдачей может сохраняться в прохладном месте от двух до двенадцати часов.

Важные особенности грамотного отбора урины переоценить сложно. Немаловажное значение уделяется таре для анализов, которая способна обеспечить все параметры отобранного материала. Приобрести такие емкости по невысокой цене можно сегодня в любой аптеке.

источник

I.ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ

· чистую сухую емкость объемом 100-200 мл, бланк направления в лабораторию,авторучку,перчатки

2. Объясните ход процедуры (перед сбором анализа провести туалет наружных половых органов). Дайте чистую сухую емкость.

II.ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ

1. Моча собирается утром после сна (средняя струя, 50-100 мл)

ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ

1. Заполните направление в лабораторию.

3. На посуду с мочой наклейте направление.

4. Отправьте посуду с мочой в лабораторию.

НАПРАВЛЕНИЕ

В клиническую лабораторию

Номер медицинской карты стационарного больного

Дата и время взятия материала

Дата и время доставки в лабораторию

Алгоритм действий при сборе мочи на сахар

Цель: диагностическая.

I.ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ.

· флакон емкостью 100-200 мл,

· бланк направления в лабораторию,

2. Объясните больному ход сбора мочи.

3. Дайте пациенту емкость для сбора мочи (3л).

4. В 6 часов утра больной опорожняет мочевой пузырь в унитаз.

II.ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ

1. В течении суток всю выделенную мочу (до 6 часов следующего дня) больной собирает только в емкость для сбора мочи (3л).

o измерьте общее количество мочи,

o тщательно размешайте всю мочу и отлейте в отдельную емкость 100-150 мл мочи.

III.ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ

1. Вылейте оставшуюся мочу в унитаз.

2. Проведите дезинфекцию 3-литровой банки.

3. Заполните направление в клиническую лабораторию и прикрепите к емкости с отлитой мочой. В направлении помимо обычных данных укажите суточное количество мочи.

4. Отправьте емкость с отлитой мочой в лабораторию.

Исследование мочи по Зимницкому

I.ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ

1. Приготовить:

8-10 флаконов с этикетками:

II.ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ

больной должен в 6 ч утра помочиться в унитаз, после этого последовательно собирать мочу в пронумерованные ёмкости, меняя их каждые 3 ч. Если мочи в течение 3 ч не оказывается, ёмкость остаётся пустой. Все восемь ёмкостей должны быть промаркированы с указанием номера порции и времени сбора мочи:

X.— № 8, 3.00-6.00.

ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ.

1. Утром следующего дня отправьте емкости с собранной мочой в клиническую лабораторию.

ПРИМЕЧАНИЕ: Лаборант измеряет объем и относительную плотность каждой трехчасовой порции мочи.

В норме удельный вес мочи 1018 – 1024.

Суточный диурез составляет 1500 – 2000 мл.

Соотношение дневного и ночного диуреза 2:1

проба по Нечипоренко: после гигиенической процедуры в чистую ёмкость собирают 5-10 мл из средней порции мочи. ПРИМЕЧАНИЕ: Для проведения исследования пациент должен собрать не менее 10 мл мочи.

В норме в 1 мл мочи содержится: лейкоцитов до 4 × 10³эритроцитов до 1 × 10³;цилиндров до 150.НАПРАВЛЕНИЕ

В клиническую лабораторию

Номер медицинской карты стационарного больного.

Проба Амбюрже: больной должен в 5 ч утра помочиться в унитаз, затем тщательно

подмыться, а в 8 ч утра помочиться в заранее подготовленную ёмкость (объёмом 0,5 л).

Проба Каковского-Аддиса: больной должен в 10 ч вечера помочиться в унитаз, ночью постараться в туалет не ходить, а утром в 8 ч после гигиенической процедуры собрать всю мочу в подготовленную ёмкость (объёмом 0,5-1 л).

Бактериологическое исследование мочи (на микрофлору): утром больной должен тщательно подмыться слабым раствором калия перманганата, затем собрать 10-15 мл мочи из средней порции в стерильную пробирку и немедленно закрыть её пробкой.

Алгоритм определения суточного диуреза.

I.ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ.

· чистую сухую емкость (3 л банка),

· лист динамического наблюдения.

Объясните пациенту ход предстоящей процедуры (в 6 часов утра он должен помочиться в унитаз и эту мочу не собирать; затем он должен собирать мочу в банку в течение суток до 6 часов утра следующего дня).
Убедитесь в прочности знаний пациентом своих последующих действий.

II. ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ.

III.ОКОНЧАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ.

Вылейте всю мочу в унитаз, продезинфицируйте банку.
Вымойте руки.
Полученные данные запишите в температурный лист, в лист динамического наблюдения за больным (в сестринскую историю болезни).

Взятие мочи на диастазу

1. Предварительно провести туалет наружных половых органов.

2. Моча собирается теплой, при самостоятельном мечеиспускании, в количестве 5-10 мл

Заполнить направление в биохимическую лабораторию в любое время суток.

42.Правила подготовки пациента к взятию кала: на копрограмму; на яйца глистов; на скрытую кровь.

Различают следующие основные методы исследования кала.

1. Копрологическое исследование (греч. kopros — кал) — изучают переваривающую способность различных отделов пищеварительного тракта:

• определяют цвет, плотность (консистенцию), оформленность, запах, реакцию (pH) и наличие видимых примесей (остатки пищевых продуктов, гной, кровь, слизь, конкременты, гельминты);

• проводят микроскопическое исследование кала, позволяющее выявить остатки белковой (мышечные и соединительные волокна), углеводной (растительная клетчатка и крахмал) и жировой (нейтральный жир, жирные кислоты, мыла) пищи, клеточные элементы (лейкоциты, эритроциты, макрофаги, кишечный эпителий, клетки злокачественных опухолей), кристаллические образования (трипельфосфаты, оксалаты кальция, кристаллы холестерина, Шарко-Ляйдена, гематоидина), слизь;

• осуществляют химический анализ на определение пигментов крови, стеркобилина, ам-

миака и аминокислот, растворимой слизи.

2. Анализ кала на скрытую кровь — реакции Грегерсена, Вебера.

3. Анализ кала на наличие простейших и яиц гельминтов.

4. Бактериологическое исследование для выявления возбудителя инфекционного заболевания кишечника.

Подготовка пациента для сдачи кала состоит из следующих этапов.

• Отмена медикаментов: за 2-3 дня до исследования больному следует отменить лекарственные средства, примеси которых могут влиять на внешний вид каловых масс, помешать микроскопическому исследованию и усилить перистальтику кишечника. К таким препаратам относят препараты висмута, железа, бария сульфат, пилокарпин, эфедрин, неостигмина метилсульфат, активированный уголь, слабительные средства, а также препараты, вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе. Не применяют также масляные клизмы.

Алгоритм действий

при взятии кала на кишечную группу инфекции*

(сальмонеллез, дизентерия, энтеропатогенные кишечные палочки)

Цель: диагностическая.

I.ПОДГОТОВКА К МАНИПУЛЯЦИИ.

· стерильную пробирку с консервантом и стерильным стержнем с тампоном,

2. Объясните пациенту ход манипуляции.

4. Помогите пациенту лечь на левый бок, спиной к Вам.

II.ВЫПОЛНЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ.

Читайте также: Примочка из мочи на ушиб

1. Осторожно извлеките стержень с тампоном из пробирки (держите его только за пробку).

2. Разведите ягодицы пациента левой рукой и осторожно введите стержень с тампоном в анальное отверстие, продвигая ее в прямую кишку вначале по направлению к пупку (3-4 см).

3. Легкими вращательными движениями постарайтесь взять материал со стенки кишки.

4. Извлеките стержень с тампоном из прямой кишки и осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, опустите в пробирку.

III.ОКОНЧАНИЕ МАПИПУЛЯЦИИ.

Заполните направление в бактериологическую лабораторию:

1. Отправьте полученный материал в лабораторию

Алгоритм действий

Опора деревянной одностоечной и способы укрепление угловых опор: Опоры ВЛ — конструкции, предназначенные для поддерживания проводов на необходимой высоте над землей, водой.

Общие условия выбора системы дренажа: Система дренажа выбирается в зависимости от характера защищаемого.

Папиллярные узоры пальцев рук — маркер спортивных способностей: дерматоглифические признаки формируются на 3-5 месяце беременности, не изменяются в течение жизни.

Механическое удерживание земляных масс: Механическое удерживание земляных масс на склоне обеспечивают контрфорсными сооружениями различных конструкций.

источник

1. Подготовить заранее емкость с крышкой для сбора мочи: вымыть с использованием моющего вещества, ополоснуть не менее 3 раз для удаления остатков моющего вещества, тщательно высушить, наклеить на нее бумагу с ФИО больного, названием отделения и номером палаты.

2. Обучить пациента технике гигиенической процедуры и правилам сдачи мочи на анализ: больному следует объяснить, что утром накануне исследования необходимо подмыть наружные половые органы и промежность тёплой водой с мылом в определённой последовательности (область лобка, наружные половые органы, промежность, область заднего прохода) и вытереть насухо кожу в таком же порядке.

3. Объяснить пациенту, где он должен оставить ёмкость с мочой, закрытую крышкой.

4. Утром после гигиенической процедуры больной должен выпустить начальную порцию мочи в унитаз на счёт «1–2», а затем задержать мочеиспускание и, подставив банку, собрать в неё 150–200 мл мочи (так называемая средняя порция струи мочи), при необходимости завершив мочеиспускание в унитаз.

5. Менструирующей пациентке в том случае, когда исследование отложить нельзя, рекомендовать закрыть влагалище ватным тампоном.

6. У тяжелобольного провести сбор мочи катетером.

7. Мочу доставить в лабораторию не позднее, чем через час после ее сбора.

Особенности сбора мочи при различных методах исследования:

— проба по Нечипоренко: после гигиенической процедуры в чистую ёмкость собирают 5–10 мл из средней порции мочи;

— проба Амбюрже: пациент должен в 5 ч утра помочиться в унитаз, затем тщательно подмыться, а в 8 ч утра помочиться в заранее подготовленную ёмкость (объёмом 0,5 л);

— проба Каковского – Аддиса: пациент должен в 10 ч вечера помочиться в унитаз, ночью постараться в туалет не ходить, а утром в 8 ч после гигиенической процедуры собрать всю мочу в подготовленную ёмкость (объёмом 0,5–1 л);

— проба Зимницкого: пациент должен в 6 ч утра помочиться в унитаз, после этого последовательно собирать мочу в пронумерованные ёмкости, меняя их каждые 3 ч; если мочи в течение 3 ч не оказывается, ёмкость остаётся пустой; все восемь ёмкостей должны быть промаркированы с указанием номера порции и времени сбора мочи: № 1 – 6.00–9.00; № 2 – 9.00–12.00;
№ 3 – 12.00–15.00; № 4 – 15.00–18.00; № 5 – 18.00–21.00; № 6 – 21.00–24.00; № 7 – 24.00–3.00; № 8 – 3.00–6.00;

— бактериологическое исследование мочи: утром пациент должен тщательно подмыться, затем собрать 10–15 мл мочи из средней порции в стерильную пробирку и немедленно закрыть её пробкой;

— сбор суточной мочи: утром в 8 ч пациент должен помочиться в унитаз, затем собирать мочу в градуированную ёмкость или трёхлитровую банку в течение суток до 8 ч утра следующего дня включительно; если планируется анализ суточной мочи на глюкозу, белок и др., после сбора мочи медицинская сестра измеряет общее количество мочи и указывает его в направлении, затем тщательно размешивает деревянной палочкой всю мочу и отливает во флакон 100–150 мл мочи для лаборатории;

— для определениядиастазы в моче в лаборатории исследуют 50 мл свежевыделенной теплой мочи.

Помощь при почечной колике:введение спазмолитических и анальгетических препаратов, применение тепла дифференцированно с учетом возраста и соматического статуса: грелки на поясничную область или горячие ванны с температурой воды 38–39 ºС продолжительностью 10–20 минут.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Лучшие изречения: Как то на паре, один преподаватель сказал, когда лекция заканчивалась — это был конец пары: «Что-то тут концом пахнет». 8319 — | 7945 — или читать все.

195.133.146.119 © studopedia.ru Не является автором материалов, которые размещены. Но предоставляет возможность бесплатного использования. Есть нарушение авторского права? Напишите нам | Обратная связь.

Отключите adBlock!
и обновите страницу (F5)
очень нужно

источник

Различают следующие виды лабораторных исследований.

• Обязательные — их назначают всем больным без исключения, например общие анализы крови и мочи.

• Дополнительные — их назначают строго по показаниям в зависимости от конкретного случая, например исследование желудочного сока для изучения секреторной функции желудка.

• Плановые — их назначают через определённое количество дней после предыдущего исследования с целью наблюдения за больным в динамике и осуществления контроля лечения, например повторный общий анализ мочи больного с обострением хронического пиелонефрита.

• Неотложные — их назначают в ургентной (неотложной) ситуации, когда от полученных результатов исследования может зависеть дальнейшая тактика лечения, например исследование содержания сердечных тропонинов в крови больного с острым коронарным синдромом.

Тропонины — высокочувствительные и высокоспецифичные биологические маркёры некроза мышцы сердца, развивающегося при инфаркте миокарда.

Материалом для лабораторного исследования может быть любой биологический субстрат.

• Выделения человеческого организма — мокрота, моча, кал, слюна, пот, отделяемое из половых органов.

• Жидкости, получаемые с помощью прокола или откачивания, — кровь, экссудаты и транссудаты, спинномозговая жидкость.

• Жидкости, получаемые с помощью инструментально-диагностической аппаратуры: содержимое желудка и двенадцатиперстной кишки, жёлчь, бронхиальное содержимое.

• Ткани органов, получаемые методом биопсии — ткани печени, почек, селезёнки, костного мозга; содержимое кист, опухолей, желёз.

Палатная медицинская сестра делает выборку назначений из истории болезни (из листа назначений) и записывает необходимые лабораторные анализы в журнал учёта анализов. После получения биологического материала (мочи, кала, мокроты и др.) она должна организовать своевременную его доставку в лабораторию, оформив направление.

Правильность результатов лабораторного исследования обеспечивается тщательным соблюдением требований к технике сбора биологического материала.

Осуществлять забор крови целесообразно в одно и то же время – утром натощак. При заборе крови из вены время наложения жгута должно быть по возможности минимальным, так как длительный стаз крови повышает содержание общего белка и его фракций, кальция, калия и других компонентов.

В зависимости от цели исследования забор крови для лабораторного анализа осуществляют из пальца (капиллярная кровь) и из вены (венозная кровь).

• Кровь из пальца берёт лаборант; этот анализ необходим для количественного и качественного изучения форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов, тромбоцитов), определения количества в крови гемоглобина и скорости оседания эритроцитов (СОЭ). Такой анализ называют общим анализом крови или общеклиническим исследованием крови.

• Кровь из вены берёт процедурная медицинская сестра посредством пункции в большинстве случаев локтевой вены; кровь смешивается в пробирке с противосвёртывающим веществом (гепарин, натрия цитрат и пр.). Забор крови из вены осуществляют с целью количественного изучения биохимических показателей крови (так называемых печёночных проб, ревматологических проб, содержания глюкозы, фибриногена, мочевины, креатинина и пр.), обнаружения возбудителей инфекции (взятие крови на гемокультуру и определение чувствительности к антибиотикам) и антител к ВИЧ. Объём забираемой из вены крови зависит от количества определяемых компонентов — обычно из расчёта 1-2 мл на каждый вид анализа.

Взятие крови на исследование из вены

Весь использованный во время манипуляции материал необходимо продезинфицировать.

• одноразовые (стерильные) шприцы с иглами;

• стерильный лоток с ватными шариками и пинцетом;

• резиновый жгут, резиновый валик и салфетка;

• 70% раствор спирта, чистые пробирки с пробочками в штативе;

• спецодежда (халат, маска, стерильные перчатки);

• лоток для использованного материала;

• тонометр, фонендоскоп, противошоковый набор лекарственных средств.

Порядок выполнения процедуры:

1. Подготовить пациента — помочь ему занять удобное положение сидя или лёжа (в зависимости от тяжести его состояния).

2. Подготовиться к процедуре: пронумеровать пробирку и направление на анализ (одинаковым порядковым номером), вымыть и высушить руки, надеть спецодежду, обработать руки ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, надеть перчатки.

3. Подложить под локоть пациента клеёнчатый валик для максимального разгибания локтевого сустава.

4. Освободить от одежды руку или поднять рукав рубашки до средней трети плеча таким образом, чтобы был обеспечен свободный доступ к области локтевого сгиба.

5. Наложить резиновый жгут в области средней трети плеча выше локтевого сгиба на 10 см и затянуть жгут, чтобы петля жгута была направлена вниз, а свободные его концы вверх (чтобы концы жгута во время венепункции не попали на обработанное спиртом поле).

6. Обработать одетые в перчатки руки 70% раствором спирта.

7. Предложить пациенту «поработать кулаком» — несколько раз сжать и разжать кулак для хорошего наполнения вены.

8. Попросить пациента сжать кулак и не разжимать до тех пор, пока медсестра не разрешит; при этом дважды обработать кожу в области локтевого сгиба ватными шариками, смоченными 70% раствором спирта, в одном направлении — сверху вниз, сначала широко (размер инъекционного поля составляет 4×8 см), затем — непосредственно место пункции.

9. Найти наиболее наполненную вену; затем кончиками пальцев левой руки оттянуть кожу локтевого сгиба в сторону предплечья и фиксировать вену.

10. В правую руку взять приготовленный для пункции шприц с иглой.

11. Провести венепункцию: держа иглу срезом вверх под углом 45°, ввести иглу под кожу; затем, уменьшив угол наклона и держа иглу почти параллельно кожной поверхности, продвинуть иглу немного вдоль вены и ввести её на треть её длины в вену (при соответствующем навыке можно одномоментно проколоть кожу над веной и стенку самой вены); при проколе вены возни кает ощущение «провала» иглы в пустоту.

12. Убедиться, что игла находится в вене, слегка потянув поршень иглы на себя; при этом в шприце должна появиться кровь.

13. Не снимая жгут, продолжить тянуть поршень шприца на себя для набора необходимого количества крови.

14. Развязать жгут и предложить больному разжать кулак.

15. Прижать ватный шарик, смоченный в 70% растворе спирта, к месту инъекции и быстро извлечь иглу.

В ряде случаев во избежание повреждения форменных элементов крови (например, при исследовании агрегационной функции тромбоцитов) кровь нельзя набирать шприцем. В такой ситуации следует набирать кровь «самотёком» — подставить под иглу (без шприца) пробирку и подождать, пока она заполнится необходимым количеством крови.

16. Предложить больному согнуть руку в локтевом сгибе вместе с ватным шариком и оставить так на 3-5 мин для остановки кровотечения.

17. Снять иглу со шприца (так как при выпуске крови из шприца через иглу могут быть повреждены эритроциты, что вызовет их гемолиз), медленно выпустить кровь в пробирку по её стенке (быстрое поступление крови в пробирку может привести к её вспениванию и, следовательно, гемолизу крови в пробирке) и закрыть пробирку пробочкой.

18. Сложить использованные материалы в специально приготовленный лоток, снять перчатки.

19. Спросить у пациента о его самочувствии, помочь ему встать или удобно лечь (в зависимости от тяжести его состояния).

20. Оформить направление в лабораторию, поместить штатив с пробирками в ёмкость для транспортировки биологических жидкостей (бикс) и отправить в лабораторию для исследования.

Исследование мочи имеет большое диагностическое значение не только при заболеваниях почек и мочевыводящих путей, но и при болезнях других органов и систем.

Различают следующие основные методы исследования мочи.

2. Количественное определение форменных элементов в моче:

• проба Нечипоренко — подсчитывают количество форменных элементов в 1 мл мочи;

• проба Амбюрже — подсчёт клеточных элементов проводят в моче, собранной за 3 ч с пересчётом на минутный диурез;

• проба Каковского-Аддиса — подсчёт клеточных элементов проводят в моче, собранной засутки.

3. Проба Зимницкого (для оценки концентрационной и выделительной функций почек): проводят сопоставление относительной плотности мочи в порциях, собранных в разные периоды одних суток (начиная с 6 ч утра каждые 3 ч в отдельные банки), и анализ соотношения дневного и ночного диуреза.

4. Бактериологическое исследование мочи — его проводят при инфекционных воспалительных заболеваниях почек и мочевыводящих путей.

5. Определение ряда параметров в моче, собранной за сутки: суточный диурез, содержание белка, глюкозы и др.

Подготовка больных к исследованию

Медицинская сестра должна обучить пациентов технике гигиенической процедуры и правилам сдачи мочи на анализ.

Больному следует объяснить, что утром накануне исследования необходимо подмыть наружные половые органы и промежность тёплой водой с мылом. В ряде ситуаций при соответствующих показаниях мочу на анализ берут катетером: у женщин во время менструации, у тяжелобольных и т.д.

Утром после гигиенической процедуры больной должен выпустить начальную порцию мочи в унитаз на счёт «1-2», а затем задержать мочеиспускание и, подставив банку, собрать в неё 150-200 мл мочи (так называемая средняя порция струи мочи).

Собранная для исследования моча должна быть отправлена в лабораторию не позднее чем через 1 ч после сбора. Хранение мочи до проведения анализа допускается только в холодильнике максимум в течение 1,5 ч.

Особенности сбора мочи при различных методах исследования:

• Общий анализ мочи: после гигиенической процедуры в чистую ёмкость собирают среднюю порцию мочи (150-200 мл).

• Проба по Нечипоренко: после гигиенической процедуры в чистую ёмкость собирают 5-10 мл из средней порции мочи.

• Проба Амбюрже: больной должен в 5 ч утра помочиться в унитаз, затем тщательно подмыться, а в 8 ч утра помочиться в заранее подготовленную ёмкость (объёмом 0,5 л).

• Проба Каковского-Аддиса: больной должен в 10 ч вечера помочиться в унитаз, ночью постараться в туалет не ходить, а утром в 8 ч после гигиенической процедуры собрать всю мочу в подготовленную ёмкость (объёмом 0,5-1 л).

• Проба Зимницкого: больной должен в 6 ч утра помочиться в унитаз, после этого последовательно собирать мочу в пронумерованные ёмкости, меняя их каждые 3 ч. Если мочи в течение 3 ч не оказывается, ёмкость остаётся пустой. Все восемь ёмкостей должны быть промаркированы с указанием номера порции и времени сбора мочи:

• Бактериологическое исследование мочи: утром больной должен тщательно подмыться слабым раствором калия перманганата или нитрофурала, затем собрать 10-15 мл мочи из средней порции в стерильную пробирку и немедленно закрыть её пробкой.

• Сбор суточной мочи: утром в 8 ч больной должен помочиться в унитаз, затем собирать мочу в градуированную ёмкость или трёхлитровую банку в течение суток до 8 ч утра следующего дня включительно. Если планируется анализ суточной мочи на глюкозу, белок и др., после сбора мочи медицинская сестра измеряет общее количество мочи и указывает его в направлении, затем тщательно размешивает деревянной палочкой всю мочу и отливает во флакон 100-150 мл мочи для лаборатории.

Мокрота представляет собой патологический секрет, выделяющийся из дыхательных путей при кашле.

Различают следующие основные методы исследования мокроты.

2. Бактериологическое исследование мокроты:

Чтобы собрать мокроту, больной должен в 8 ч утра натощак почистить зубы и тщательно прополоскать рот кипячёной водой. Затем он должен сделать несколько глубоких вдохов или дождаться позыва на кашель, после чего откашлять мокроту (в объёме 3-5 мл) в заранее выданную ему чистую сухую градуированную банку и закрыть её крышкой. Для сбора мокроты с целью бактериологического исследования выдают стерильную ёмкость; в этом случае нужно предупредить больного, чтобы он не касался краёв посуды руками или ртом.

Исследование кала — важная составная часть обследования пациентов, особенно с заболеваниями ЖКТ. Правильность результатов исследования кала во многом зависит от грамотной подготовки больного.

Различают следующие основные методы исследования кала.

1. Копрологическое исследование

2. Анализ кала на скрытую кровь — реакции Грегерсена, Вебера.

3. Анализ кала на наличие простейших и яиц гельминтов.

4. Бактериологическое исследование.

Подготовка пациента для сдачи кала состоит из следующих этапов.

• Коррекция пищевого режима:

— При анализе кала на скрытую кровь больному за 3 дня до сдачи кала назначают молочно-растительную диету и исключают железосодержащие продукты (мясо, печень, рыбу, яйца, томаты, зелёные овощи, гречневую кашу), так как они могут выступать катализаторами в реакциях, используемых для обнаружения крови. Во избежание получения ложноположительного результата необходимо убедиться в отсутствии у больного кровоточивости дёсен, носовых кровотечений и кровохарканья; больному запрещается чистить зубы.

Непосредственная подготовка пациента к исследованию:

1. Больному выдают чистый сухой флакон. Следует объяснить, что он должен опорожнить кишечник в судно. Сразу после дефекации больной должен взять палочкой из нескольких разных участков испражнений 5-10 г кала, поместить собранные фекалии во флакон, который сразу следует закрыть крышкой, и вместе с направлением оставить в санитарной комнате в специально отведённом для этого месте.

2. При анализе кала на скрытую кровь, если дёсны больного кровоточат, необходимо предложить ему за 2-3 дня до исследования не чистить зубы щёткой и рекомендовать полоскать рот 3% раствором питьевой соды.

3. Для бактериологического исследования кала больному выдают стерильную пробирку с консервантом.

4. Кал следует доставить в лабораторию в течение 8 ч после сбора (в условиях стационара — в течение 1 ч). Исследуют кал не позднее 8-12 ч после его выделения, а до этого его сохраняют при температуре от 3 до 5 °С.

Практические навыки по теме

1. Постановка желудочного зонда.

2. Постановка клизм (сифонной, очистительной, лекарственной), газоотводной трубки.

3. Катетеризация мочевого пузыря у женщин.

4. Постановка мягкого мочевого катетера у мужчин.

5. Правила забора мочи и кала на анализ.

6. Проведение пробы Зимницкого.

7. Измерение суточного диуреза.

8. Сбор мочи для проведения функциональных проб почек.

11. Взятие крови из вены на гемокультуру.

12. Сбор мокроты для исследования.

Оснащение занятия

1. Фантом для выполнения клизм, катетеризации мочевого пузыря.

2. Фантом для выполнения внутривенных инъекций.

3. Учебные таблицы, компьютерные презентации.

4. Раздаточный материал – направления на анализы.

5. Шприцы, пробирки (вакуумные), иглы.

11. Мягкие мочевые катетеры. Жесткий женский катетер.

13. Фартук, резиновые перчатки.

14. Клизмы (баллон, кружка Эсмарха, одноразовые системы для выполнения клизм).

Занятие проводится на базе фантомного класса.

Литература для подготовки к занятию

7. Ослопов В.Н., Богоявленская О.В. Общий уход за больными в терапевтической клинике. – изд. Гэотар-Медиа, 2007. – 204 с.

8. Общий уход за терапевтическими больными: Учебное пособие для студентов /сост. А.Н. Калягин. Под ред. Ю.А. Гарляева. — М.: ФГОУ «ВУНМЦ Росздрава», 2006. – 233 с.

9. Джамбекова А.К., Клипина Т.Ю. Справочник медицинской сестры. – М: «Эксмо», 2008. – 448 с.

10. Гребнев А.Л. и соавт. Основы общего ухода за больными. – Москва, 1999. – 288 с.

11. Основы сестринского дела: Практикум /Т.П. Обуховец. – изд. 12-ое, стер. – Ростов н/Д.: Феникс, 2012. – 603 с.

12. Тоблер Рита Основные медсестринские процедуры./ Пер. с англ. А.В. Сучкова. – М: «Медицина», 2004. – 240 с.

Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования

«Санкт-Петербургская государственная педиатрическая медицинская академия»

Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации

Последнее изменение этой страницы: 2016-04-07; Нарушение авторского права страницы

источник

Правила забора, хранения и транспортировки биологического материала для микробиологического исследования.

Материал для бактериологического исследования берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биологический материал.
Необходимо соблюдать асептику, избегая контаминации биологического материала посторонней микрофлорой.
Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования.
Собирают материал в стерильную посуду с пробками, полученную в микробиологической лаборатории: для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны, для крови, гноя, спинномозговой жидкости и экссудатов используют стерильные шприцы и специализированные транспортные среды, для мокроты, мочи и кала — стерильные плотно закрывающиеся небьющиеся контейнеры.

Внимание: необходимо следить за сроками годности посуды, полученной в лаборатории. Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!).
При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч.
Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла.
Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава, куда из шприца уколом иглы через резиновую плотно завальцованную крышку вносят материал. Можно использовать анаэробные коммерческие тампоны с транспортной средой.
Транспортировка осуществляется в металлических биксах (пеналах), термоконтейнерах, которые должны легко подвергаться обработке.
К материалу прилагают сопроводительный документ, где указывают наименование, источник и метод получения биологического материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, № палаты; предполагаемый диагноз инфекционной патологии и предшествующую антибактериальную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал для проведения бактериологического исследования.

Внимание: погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности.

Для взятия крови используют стерильные шприцы или специальные системы для забора крови одноразового пользования.
Кровь берут во время подъёма температуры из периферической вены с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью (использовать перчатки).
Кровь засевают в питательные среды сразу после взятия у постели больного или процедурной.
Перед использованием флаконов визуально определяют прозрачность среды, любое помутнение свидетельствует об их непригодности.
При подозрении на анаэробную инфекцию необходимо одновременно собирать кровь в два флакона – с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования.
Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция катетерного происхождения.

Использование коммерческих сред:
» для аэробных микроорганизмов (с зелёной крышкой)
» для анаэробных микроорганизмов (с красной крышкой)
» педиатрические флаконы (с жёлтой крышкой) для исследования крови в объёме до 5 мл.

Снимают предохранительную пластиковую крышку.
Дезинфицируют резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком).
Дают просохнуть обработанной поверхности.
Прокалывают пробку флакона иглой шприца и производят посев крови.
Объём исследуемой крови по прилагаемой инструкции — обычно 10-30 мл для взрослых и 1-5 мл для детей до 12 л (метка на этикетке флакона позволяет оценить объём взятой крови).
Сначала производят посев в «анаэробный» флакон, затем – в «аэробный» во избежание попадания воздуха из шприца.
Перемешивают осторожно круговыми движениями содержимое флакона.
Маркируют флаконы и до транспортировки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике!!)
Исследования крови и других жидкостей организма с помощью анализатора культур крови BacT/ALERT.

Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пунции боковых желудочков мозга в объеме 3-5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию.
Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков.
При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате.
При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).

Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости.
Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации.
Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок.
Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл.
Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой.
Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце.
Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий.
При необходимости лучше использовать гепарин.
При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 — 1:10 (5-10 мл). Однако при этом становится невозможной прямая бактериоскопия материала, а сроки идентификации удлиняются на сутки в сравнении с изолятами, выделенными при первичном посеве на плотные среды.

Взятие материала производит лечащий врач во время операции или перевязки.
В большинстве случаев исследуют поражённые ткани и аспираты.
Наиболее правильный способ взятия жидких материалов – объёмно с помощью стерильного шприца. Отбор материала тампоном производят только при невозможности осуществления объёмного метода.
Промыванием раневой поверхности физ. раствором удаляют местно применяемые антисептические и антибактериальные препараты.
Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой.
Все ёмкости с отобранным материалом плотно закрывают стерильными пробками.
Доставляют в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов.

Отделяемое открытых инфицированных ран
Материал берут двумя стерильными тампонами (один для посева, второй — для бактериоскопии) круговыми вращательными движениями от центра к периферии поражённого участка помещают в стерильную пробирку.

Кусочки тканей
Помещают в другую плотно закрывающуюся стерильную ёмкость (пробирку), содержащую небольшое количество стерильного физ. раствора.

Материал при инфекциях нижних дыхательных путей

Накануне, за 6-8 часов (на протяжении ночи, предшествующей забору материала) отменяют все медикаменты и процедуры.
Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики.

Читайте также: Во рту был вкус мочи

Край век.
Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.

Материал при инфекциях урогенитального тракта
Внимание: взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог до проведения мануального исследования
Амниотическаю жидкость
Собирают через катетер, либо аспирируют при кесаревом сечении, либо пунктируют плодный пузырь.

Придатки матки.
Материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки ткани) получают при оперативном вмешательстве или при диагностической пункции опухолевидных образований, проводимой через влагалищные своды.

Общие показания к обследованию: сепсис неясной этиологии, гангрена, абсцессы, флегмона, перитонит, экссудативный плеврит, нагноения ран с подозрением на анаэробную инфекцию, гнойный артрит.
Образцы клинического материала для исследования на анаэробы во избежания контакта с атмосферным воздухом получают при использовании инвазивных методов забора.

Исследуемые материалы: кровь, плевральная, перитонеальная и синовиальная жидкости, гной из абсцессов и других закрытых полостей (если объем гноя превышает 2 мл, то в пробирке под резиновой пробкой сохраняются относительно анаэробные условия в течение нескольких часов), материалы из глубоких отделов свища (после очистки и асептической обработки наружного отверстия) и ран.

Если нет возможности использовать метод аспирации шприцем, материал берут стерильным ватным тампоном, который помещают в анаэробную транспортную среду сохранения и до транспортировки в лабораторию содержат при комнатной температуре;
Фрагменты костной и мышечной тканей размером 1×1 см, взятые из глубокого очага воспаления во время операции (если сроки доставки материалов в лабораторию превышают 15-20 мин, фрагменты тканей погружают в небольшой объем стерильного физраствора).

Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого кишечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п.
Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез. раствором и тщательно промытого водой судна, горшка, специального лотка или с пеленки с помощью стерильной стеклянной палочки, проволочной петли или деревянного шпателя.
Порцию фекалий помещают в стерильный флакон.
Объём испражнений для исследования на патогенные энтеробактерии, флору и на дисбактериоз должен составлять 1/3 флакона, объёмом 20 мл.
При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, хлопья, гной) их следует включать в исследуемую пробу.
Материал доставляется в лабораторию в кратчайшие сроки
Испражнения для исследования на патогенные энтеробактерии можно получить непосредственно из прямой кишки с помощью ректальных, ватных или ватно — марлевых тампонов, укрепленных на металлической или деревянной палочке, вводя их круговыми движениями в прямую кишку на 6-8 см.

Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно по порциям: А, В и С (соответственно дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков) в три стерильные пробирки , либо во время оперативного вмешательства с помощью шприца в одну пробирку.
Дуоденальное содержимое и желчь имеют зеленовато — желтый цвет и щелочную реакцию. Кислая реакция, белесоватый оттенок жидкости, наличие хлопьев, свидетельствует о примеси желудочного сока, такой материал не пригоден для исследования.
Полученные порции желчи доставляют в лабораторию не позднее 1-2 часа от момента получения, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении

Отбор проб грудного молока производится в поликлинике или стационаре в специально выделенном помещении.
Перед сцеживанием молока женщина должна вымыть руки с мылом, тщательно обрабатывает соски и околососковую область молочных желез отдельными ватными тампонами, смоченными 700 спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
Молоко из правой и левой молочных желез собирается в отдельную посуду.
Первые 5-10 мл сцеженного молока исследованию не подлежат.
Последующие 3-5 мл сцеживаются в стерильные флаконы, которые закрываются стерильными пробками и доставляются в лабораторию не позднее 2-х часов в вертикальном положении во избежании опрокидывания и замачивания пробок.
До момента исследования молоко должно храниться в холодильнике.
Сцеженное накануне молоко исследованию не подлежит.

Соскоб из носа.
Необходимо предварительно очистить полость носа от слизи ( взрослым – высморкаться, детям – очистить с помощью ватных турунд). Тампон вводят на глубину 2-3- см до нижней раковины, затем слегка опускают книзу , вводят в нижний носовой ход под нижнюю раковину, делают вращательное движение на пол оборота, таким образом, чтобы в мазке было как можно больше эпителиальных клеток. Удаляют тампон вдоль наружной стенки носовой полости, опускают в пробирку с физиологическим раствором. Палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.

Для ранней диагностики краснухи выявляют антиген в клетках цилиндрического эпителия носа от больных или контактных. В качестве материала для исследования служит соскоб из нижнего носового хода (см.п.1- соскоб из носа).

Мазки из зева
Рекомендуется мазки делать до еды. Мазки отобрать при помощи сухого стерильного ватного тампона на палочке, которым протереть поверхность миндалин, задней стенки глотки и небных дужек. Тампон не должен касаться языка и слизистой полости рта. После взятия мазка тампон поместить в среду (розового цвета) во флакон, закрыть его пробкой.

Пробы фекалий
Для обследования контактных с рота -, энтеро-, полиовирусной инфекцииями забирают пробы фекалий массой 1-2 г. в чистый флакон.

источник

1. Сбор средней части утренней порции мочи

Подготовка пациента к взятию пробы мочи

Для анализа подходит утренняя порция мочи, взятая сразу после пробуждения.
От последнего мочеиспускания до взятия мочи на анализ должно пройти не менее 4-6 часов.
За 10-14 часов до взятия пробы мочи нельзя есть или пить. В случае необходимости можно выпить один стакан чистой негазированной воды без каких-либо добавок.
Перед взятием пробы следует избегать:
- Физической и эмоциональной нагрузки
- Приема лекарственных препаратов

Первая утренняя порция мочи является стандартным материалом для теста-полоски, микроскопии осадка, определения соотношения альбумина и креатинина в моче и для микробиологических анализов.
Мочу следует собирать сразу в предназначенную для этого посуду. Переливание из одной посуды в другую не разрешается.
Контейнер для взятия пробы мочи должен быть стерильным ис герметично закрывающейся крышкой. Не трогайте посуду изнутри, а также не кладите внутрь посторонние предметы.
Все принадлежности для взятия пробы (стаканчики, пробирки, трубочки) предусмотрены для одноразового использования.
Необходимые принадлежности Вы можете спросить в лаборатории или у врача. Разрешено использовать только данную посуду, использование любой другой посуды (домашней) не разрешается.
В течение 15 минут после взятия мочи нужно перенести мочу из стаканчика в вакуумные пробирки.
У младенцев и маленьких детей следует использовать специальные мешки для сбора мочи. После тщательного туалета наружных половых органов ребенка, следует закрепить мешочек и в течение 10-15 минут собирать выделяющуюся мочу. Мочу перенести с помощью cпециальной трубочки из мешочка в пробирку.

Перед мочеиспусканием пациент должен помыть наружные половые органы теплой проточной водой. Моющие средства (мыло, мочалку и т.п.) использовать нельзя. Важно вымыть наружное отверстие мочеиспускательного канала. Для этого у женщин надо раздвинуть половые губы пальцами, у мужчин сдвинуть назад крайнюю плоть.
Аккуратно подсушите наружные половые органы бумажным полотенцем.
Если у женщин на момент взятия мочи на анализ имеются менструальные или какие-либо другие выделения, то необходимо использовать влагалищный тампон.
При мочеиспускании следует следить за тем, чтобы наружное отверстие мочеиспускательного канала было обнажено.
Для взятия мочи снимите со стаканчика крышку и положите её рядом наклейкой вниз . NB! Не отклеивайте наклейкус крышки стаканчика!
Для взятия мочи несколько миллилитров мочи следует спустить в унитаз, затем, не прерывая струи, следует направить ее в контейнер, заполнив стаканчик на три четверти. Затем можно закончить мочеиспускание в унитаз.
После сбора мочи следует плотно закрыть контейнер крышкой.
В течение 15 минут после взятия мочи перенесите мочу из стаканчика в пробирки. NB! Не снимайте с пробирок пробки!
Если нужно заполнить несколько пробирок, то сначала заполните пробирку с зелёной пробкой, затем пробирку с бежевой пробкой.

Для переноса мочи в пробирки:

1. Используя специальный стаканчик с иглой в крышке:

Частично снимите с крышки наклейку (не выкидывайте её). В отверстии Вы увидите покрытую латексом иглу.
Вставьте пробирку в отверстие стаканчика крышкой вперёд и надавите до упора (игла при этом проткнёт пробку).
Держите пробирку до тех пор, пока струя мочи не прекратит поступать в пробирку.
Удалите пробирку из отверстия и, при необходимости, заполните таким же образом следующую .

2. Используя стерильный стаканчик и специальную трубочку(выполняется медицинским работником в связи с опасностью травмирования):

Снимите со стаканчика для пробы крышку.
Направьте трубочку тонким концом в контейнер с мочой.
Вставьте пробирку (крышкой вперёд) в широкое отверстие трубочки (игла проткнёт пробку).
Держите пробирку до тех пор, пока струя мочи не прекратит поступать в пробирку.
Удалите пробирку из отверстия и, при необходимости, заполните следующую.

Переверните пробирку плавными движениями вверх дном и обратно 8-10 раз, чтобы находящееся в пробирке добавление растворилось.
Маркируйте пробирку(ки): напишите на боковой поверхности пробирки имя или наклейте вертикально сверху вниз, по возможности прямо и гладко, штрих-код. Также напишите дату и время взятия мочи.
Использованные принадлежности для взятия пробы:
- Удостовертесь, чтобы отверстие на крышке стаканчика было плотно заклеено наклейкой.
- Вылейте оставшуюся в стаканчике мочу в унитаз.
- Выкиньте стаканчик для мочи в контейнер для бытовых отходов
- Пробы нужно отнести в лабораторию/врачу в тот же самый день, когда была взята моча.
- Храните пробы до того, как отнесёте их в лабораторию или врачу, при температуре +2…+8°C.

2. Сбор мочи (катетеризирование)

Перед пункцией постоянного катетера его следует закрыть на 0,5-1 час.
Поверхность катетера очищается дезинфицирующим раствором.
Катетер пунктируется стерильной канюлей или иглой.
Моча собирается в специальный контейнер.
NB! Для исследования не подходит материал из мочеприемника.
Контейнер необходимо маркировать.

3. Сбор мочи при нефростоме

Поверхность вокруг стомы и саму стому тщательно очищают дезинфицирующим раствором.
Для сбора мочи поместить новый мешочек.
С помощью стерильной пипетки перенести необходимое количество мочи из мешочка для сбора мочи в стерильный контейнер для пробы.
Перенести мочу из стерильного контейнера в вакуумные пробирки.
Маркировать пробирки.

Мочевой пузырь должен быть наполнен и выходить из малого таза.
Перед пункцией кожа очищается дезинфицирующим раствором.
Мочевой пузырь пунктируется с помощью иглы по средней линии живота, кверху от симфиза.
Мочу перенести в пробирки с помощью шприца.
Для исследования на анаэробы моча из иглы сразу помещается в специальную систему для посева.
Маркировать пробирки.

5. Сбор первой утренней порции мочи для молекулярно-диагностического исследования

Моча для молекулярно-диагностического исследования используется только у мужчин.
Перед взятием материала на исследование не следует мыть наружные половые органы.
Для анализа нужно взять первые 3-5 мл мочи из первой утренней порции.
Мочу собирать в стерильный контейнер для сбора мочи.
Маркировать контейнер.

6. Сбор мочи при массаже простаты

Прежде всего собирается 10 мл средней части мочи в 1-й контейнер.
Проводится массаж предстательной железы per rectum.
Затем собирается 10 мл мочи в другой контейнер
Контейнеры необходимо маркировать.

7. Сбор суточной (24 ч) мочи (исследования на катехоламины и др.)

Суточную, т.е собранную за 24 часа мочу, собирают в чистый 2-3 литровый градуированный сосуд с плотно закрывающейся крышкой. Посуду для сбора мочи можно получить в лаборатории.
Пациент не нуждается в специальном инструктаже.
Утром, в первый день сбора мочи, следует опорожнить мочевой пузырь в унитаз, фиксируя при этом время мочеиспускания (то есть время начала сбора мочи) в направлении.
NB! Для определения катехоламинов, кальция, магния и фосфата после первого мочеиспускания в контейнер к моче добавляется в качестве консерванта концентрированная кислота HCl. ( HCl имеет сильный разъедающий эффект!). Для определения катехоламинов (метанефрин и норметанефрин) – 10 мл; Ca, Mg и P – 25 mL
Соляную кислоту (HCl) Вам выдадут вместе с тарой в лаборатории.
Все последующие порции мочи следует собирать в контейнер для сбора мочи. Ни одна из порций не должна остаться неучтённой, то есть слитой куда-либо в другое место, кроме контейнера для сбора суточной мочи.
В промежутках между мочеиспусканиями контейнер для сбора мочи следует хранить в тёмном и прохладном месте.
При добавлении каждой следующей порции мочу нужно перемешивать.
Последняя порция мочи берётся на следующее утро, точно в то же время, когда был начат сбор, фиксируя в направлении время завершения сбора мочи.
По окончании сбора мочи измеряют ее объем с помощью имеющейся шкалы и фиксируют полученное количество в направлении.
В лабораторию можно послать всю мочу в данном контейнере, а можно послать только 50 мл (предварительно хорошо перемешав всё количество мочи).
Маркировать контейнер.

MEIE VEEBILEHE PARIMA KASUTAMISE HUVIDES PAIGALDATAKSE TEIE ARVUTISSE “KÜPSISEID”, MIS JÄLGIVAD LEHE KASUTAMIST. VEEBILEHE KÕIKIDE FUNKTSIONAALSUSTE KASUTAMISEKS, KLIKAKE NUPUL “OK”. LINKIDELE VAJUTADES LEIATE LÄHEMAT TEAVET MEIE ANDMEKAITSEPOLIITIKA JA “ KÜPSISTE” POLIITIKA KOHTA.

источник