Посев мочи по приказу 535

Приказ Минздрава СССР от 22 апреля 1985 г. N 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений»

Приказ Минздрава СССР от 22 апреля 1985 г. N 535
«Об унификации микробиологических (бактериологических)методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений»

Микробиологические (бактериологические) исследования занимают важное место в общем комплексе клинико-лабораторных исследований, применяемых для профилактики, диагностики и лечения гнойно-воспалительных заболеваний и осложнений у больных в лечебно-профилактических учреждениях.

Современная клиническая медицина предъявляет к микробиологическим (бактериологическим) исследованиям возрастающие требования по увеличению объема, повышению качества исследований, разработке и внедрению новых более совершенных методов. Это связано как с новыми научными достижениями в области эпидемиологии и бактериологии, так и с увеличением гнойно-воспалительных заболеваний, ростом госпитальных инфекций.

Этиологическая структура возбудителей инфекционных процессов в последнее десятилетие изменилась: значительно увеличился удельный вес заболеваний, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами (около 200 видов условно-патогенных микроорганизмов). Возрастает роль неспорообразующих анаэробов и некоторых других видов микроорганизмов, роль которых в инфекционной патологии ранее была неизвестна.

Принадлежность возбудителей гнойно-воспалительных заболеваний к условно-патогенным и сапрофитическим организмам существенно изменяет проведение и оценку микробиологических (бактериологических) исследований и требует новых методических подходов.

Для развития микробиологических (бактериологических) исследований в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений необходимо дальнейшее совершенствование материально-технической базы лабораторий, расширение номенклатуры стандартных селективных питательных сред, стандартных наборов для экспресс-методов идентификации условно-патогенных микроорганизмов, агглютинирующих сывороток и увеличение выпуска некоторых видов оборудования.

Требует совершенствования система заявок на бактерийные препараты для клинико-диагностических лабораторий.

В целях совершенствования микробиологических (бактериологических) лабораторных исследований в лечебно-профилактических учреждениях, повышения уровня и эффективности микробиологической диагностики:

1. Методические указания по применению унифицированных микробиологических (бактериологических) методов исследования в клинико-диагностических лабораториях (приложение 1).

2. Задание на разработку сухих питательных сред, тест-наборов, агглютинирующих сывороток для диагностики заболеваний, вызванных условно-патогенными микроорганизмами (приложение 2).

1. Министрам здравоохранения союзных и автономных республик, заведующим краевыми, областными отделами здравоохранения, начальникам главных управлений здравоохранения Московского, Ленинградского, Киевского и Ташкентского горисполкомов и Московского облисполкома:

— обеспечить освоение сотрудниками клинико-диагностических лабораторий унифицированных микробиологических (бактериологических) методов исследования и организовать, начиная с 1985 года, проведение микробиологических (бактериологических) исследований во всех клинико-диагностических лабораториях по унифицированным методам, утвержденным настоящим приказом (согласно приложению 1).

2. Главному управлению по производству бактерийных и вирусных препаратов (тов. Хлябич Г.Н.) для обеспечения проведения микробиологических (бактериологических) исследований в соответствии с унифицированными методами, принять меры по увеличению номенклатуры современных унифицированных питательных селективных сухих стандартных сред для условно-патогенных микроорганизмов; тест-систем для идентификации микроорганизмов; агглютинирующих сывороток (в соответствии с приложением 2).

3. Главному аптечному управлению Министерства здравоохранения СССР (тов. Клюев М.А.), в целях наиболее полного удовлетворения потребности клинико-диагностических лабораторий бактерийными препаратами организовать их обеспечение в соответствии с номенклатурой, предусмотренной заявкой на бактерийные и вирусные препараты через Министерства здравоохранения союзных республик.

4. Главному управлению учебных заведений Министерства здравоохранения СССР (тов. Лакин К.М.) в течение 1986 года разработать методические рекомендации по применению унифицированных методов исследования для преподавателей кафедр микробиологии институтов усовершенствования врачей.

Контроль за выполнением настоящего приказа возложить на Главное управление лечебно-профилактической помощи (тов. Москвичев А.М.).

Разрешается размножить приказ в необходимом количестве.

источник

Приказ Минздравсоцразвития РФ от 22.08.2005 N 535 Об утверждении классификаций и критериев, используемых при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ И СОЦИАЛЬНОГО РАЗВИТИЯ

от 22 августа 2005 г. N 535

ОБ УТВЕРЖДЕНИИ КЛАССИФИКАЦИЙ И КРИТЕРИЕВ,

ИСПОЛЬЗУЕМЫХ ПРИ ОСУЩЕСТВЛЕНИИ МЕДИКО-СОЦИАЛЬНОЙ ЭКСПЕРТИЗЫ

ГРАЖДАН ФЕДЕРАЛЬНЫМИ ГОСУДАРСТВЕННЫМИ УЧРЕЖДЕНИЯМИ

В соответствии с пунктом 2 Постановления Правительства Российской Федерации от 13 августа 1996 г. N 965 «О порядке признания граждан инвалидами» (Собрание законодательства Российской Федерации, 1996, N 34, ст. 4127; 2005, N 7, ст. 560) приказываю:

Утвердить по согласованию с Министерством образования и науки Российской Федерации и Министерством финансов Российской Федерации классификации и критерии, используемые при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы, согласно приложению.

здравоохранения и социального

развития Российской Федерации

от 22 августа 2005 г. N 535

ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ПРИ ОСУЩЕСТВЛЕНИИ МЕДИКО-СОЦИАЛЬНОЙ ЭКСПЕРТИЗЫ

ГРАЖДАН ФЕДЕРАЛЬНЫМИ ГОСУДАРСТВЕННЫМИ УЧРЕЖДЕНИЯМИ

1. Классификации, используемые при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы, определяют основные виды нарушений функций организма человека, обусловленные заболеваниями, последствиями травм или дефектами, и степени их выраженности; основные категории жизнедеятельности человека и степени выраженности ограничений этих категорий.

2. Критерии, используемые при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы, определяют условия установления степени ограничения способности к трудовой деятельности и групп инвалидности (категории «ребенок-инвалид»).

II. Классификации основных видов нарушений функций

организма и степени их выраженности

3. К основным видам нарушений функций организма человека относятся:

нарушения психических функций (восприятия, внимания, памяти, мышления, интеллекта, эмоций, воли, сознания, поведения, психомоторных функций);

нарушения языковых и речевых функций (нарушения устной (ринолалия, дизартрия, заикание, алалия, афазия) и письменной (дисграфия, дислексия), вербальной и невербальной речи, нарушения голосообразования и пр.);

нарушения сенсорных функций (зрения, слуха, обоняния, осязания, тактильной, болевой, температурной и других видов чувствительности);

нарушения статодинамических функций (двигательных функций головы, туловища, конечностей, статики, координации движений);

нарушения функций кровообращения, дыхания, пищеварения, выделения, кроветворения, обмена веществ и энергии, внутренней секреции, иммунитета;

нарушения, обусловленные физическим уродством (деформации лица, головы, туловища, конечностей, приводящие к внешнему уродству, аномальные отверстия пищеварительного, мочевыделительного, дыхательного трактов, нарушение размеров тела).

4. При комплексной оценке различных показателей, характеризующих стойкие нарушения функций организма человека, выделяются четыре степени их выраженности:

1 степень — незначительные нарушения,

2 степень — умеренные нарушения,

3 степень — выраженные нарушения,

4 степень — значительно выраженные нарушения.

III. Классификации основных категорий жизнедеятельности

человека и степени выраженности ограничений этих категорий

5. К основным категориям жизнедеятельности человека относятся:

способность к самообслуживанию;

способность к самостоятельному передвижению;

способность контролировать свое поведение;

способность к трудовой деятельности.

6. При комплексной оценке различных показателей, характеризующих ограничения основных категорий жизнедеятельности человека, выделяются 3 степени их выраженности:

а) способность к самообслуживанию — способность человека самостоятельно осуществлять основные физиологические потребности, выполнять повседневную бытовую деятельность, в том числе навыки личной гигиены:

1 степень — способность к самообслуживанию при более длительной затрате времени, дробности его выполнения, сокращении объема, с использованием при необходимости вспомогательных технических средств;

2 степень — способность к самообслуживанию с регулярной частичной помощью других лиц с использованием при необходимости вспомогательных технических средств;

3 степень — неспособность к самообслуживанию, нуждаемость в постоянной посторонней помощи и полная зависимость от других лиц;

б) способность к самостоятельному передвижению — способность самостоятельно перемещаться в пространстве, сохранять равновесие тела при передвижении, в покое и перемене положения тела, пользоваться общественным транспортом:

1 степень — способность к самостоятельному передвижению при более длительной затрате времени, дробности выполнения и сокращении расстояния с использованием при необходимости вспомогательных технических средств;

2 степень — способность к самостоятельному передвижению с регулярной частичной помощью других лиц с использованием при необходимости вспомогательных технических средств;

3 степень — неспособность к самостоятельному передвижению и нуждаемость в постоянной помощи других лиц;

в) способность к ориентации — способность к адекватному восприятию окружающей обстановки, оценке ситуации, способность к определению времени и места нахождения:

1 степень — способность к ориентации только в привычной ситуации самостоятельно и (или) с помощью вспомогательных технических средств;

2 степень — способность к ориентации с регулярной частичной помощью других лиц с использованием при необходимости вспомогательных технических средств;

3 степень — неспособность к ориентации (дезориентация) и нуждаемость в постоянной помощи и (или) надзоре других лиц;

г) способность к общению — способность к установлению контактов между людьми путем восприятия, переработки и передачи информации:

1 степень — способность к общению со снижением темпа и объема получения и передачи информации; использование при необходимости вспомогательных технических средств помощи;

2 степень — способность к общению при регулярной частичной помощи других лиц с использованием при необходимости вспомогательных технических средств;

3 степень — неспособность к общению и нуждаемость в постоянной помощи других лиц;

д) способность контролировать свое поведение — способность к осознанию себя и адекватному поведению с учетом социально-правовых и морально-этических норм:

1 степень — периодически возникающее ограничение способности контролировать свое поведение в сложных жизненных ситуациях и (или) постоянное затруднение выполнения ролевых функций, затрагивающих отдельные сферы жизни, с возможностью частичной самокоррекции;

2 степень — постоянное снижение критики к своему поведению и окружающей обстановке с возможностью частичной коррекции только при регулярной помощи других лиц;

3 степень — неспособность контролировать свое поведение, невозможность его коррекции, нуждаемость в постоянной помощи (надзоре) других лиц;

е) способность к обучению — способность к восприятию, запоминанию, усвоению и воспроизведению знаний (общеобразовательных, профессиональных и др.), овладению навыками и умениями (профессиональными, социальными, культурными, бытовыми):

1 степень — способность к обучению, а также к получению образования определенного уровня в рамках государственных образовательных стандартов в образовательных учреждениях общего назначения с использованием специальных методов обучения, специального режима обучения, с применением при необходимости вспомогательных технических средств и технологий;

2 степень — способность к обучению только в специальных (коррекционных) образовательных учреждениях для обучающихся, воспитанников с отклонениями в развитии или на дому по специальным программам с использованием при необходимости вспомогательных технических средств и технологий;

3 степень — неспособность к обучению;

ж) способность к трудовой деятельности — способность осуществлять трудовую деятельность в соответствии с требованиями к содержанию, объему, качеству и условиям выполнения работы:

1 степень — способность к выполнению трудовой деятельности в обычных условиях труда при снижении квалификации, тяжести, напряженности и (или) уменьшении объема работы, неспособность продолжать работу по основной профессии при сохранении возможности в обычных условиях труда выполнять трудовую деятельность более низкой квалификации;

2 степень — способность к выполнению трудовой деятельности в специально созданных условиях труда с использованием вспомогательных технических средств и (или) с помощью других лиц;

3 степень — неспособность к трудовой деятельности или невозможность (противопоказанность) трудовой деятельности.

7. Степень ограничения основных категорий жизнедеятельности человека определяется исходя из оценки их отклонения от нормы, соответствующей определенному периоду (возрасту) биологического развития человека.

IV. Критерии установления степени ограничения

способности к трудовой деятельности

8. Способность к трудовой деятельности включает в себя:

способность человека к воспроизведению специальных профессиональных знаний, умений и навыков в виде продуктивного и эффективного труда;

способность человека осуществлять трудовую деятельность на рабочем месте, не требующем изменений санитарно-гигиенических условий труда, дополнительных мер по организации труда, специального оборудования и оснащения, сменности, темпов, объема и тяжести работы;

способность человека взаимодействовать с другими людьми в социально-трудовых отношениях;

способность к мотивации труда;

способность соблюдать рабочий график;

способность к организации рабочего дня (организации трудового процесса во временной последовательности).

9. Оценка показателей способности к трудовой деятельности производится с учетом имеющихся профессиональных знаний, умений и навыков.

10. Критерием установления 1 степени ограничения способности к трудовой деятельности является нарушение здоровья со стойким умеренно выраженным расстройством функций организма, обусловленное заболеваниями, последствиями травм или дефектами, приводящее к снижению квалификации, объема, тяжести и напряженности выполняемой работы, невозможности продолжать работу по основной профессии при возможности выполнения других видов работ более низкой квалификации в обычных условиях труда в следующих случаях:

при выполнении работы в обычных условиях труда по основной профессии с уменьшением объема производственной деятельности не менее чем в 2 раза, снижением тяжести труда не менее чем на два класса;

при переводе на другую работу более низкой квалификации в обычных условиях труда в связи с невозможностью продолжать работу по основной профессии.

11. Критерием установления 2 степени ограничения способности к трудовой деятельности является нарушение здоровья со стойким выраженным расстройством функций организма, обусловленное заболеваниями, последствиями травм или дефектами, при котором возможно осуществление выполнения трудовой деятельности в специально созданных условиях труда, с использованием вспомогательных технических средств и (или) с помощью других лиц.

12. Критерием установления 3 степени ограничения способности к трудовой деятельности является нарушение здоровья со стойким значительно выраженным расстройством функций организма, обусловленное заболеваниями, последствиями травм или дефектами, приводящее к полной неспособности к трудовой деятельности, в том числе в специально созданных условиях, или противопоказанности трудовой деятельности.

V. Критерии установления групп инвалидности

13. Критерием для определения первой группы инвалидности является нарушение здоровья человека со стойким значительно выраженным расстройством функций организма, обусловленное заболеваниями, последствиями травм или дефектами, приводящее к ограничению одной из следующих категорий жизнедеятельности или их сочетанию и вызывающее необходимость его социальной защиты:

способности к самообслуживанию третьей степени;

способности к передвижению третьей степени;

способности к ориентации третьей степени;

способности к общению третьей степени;

способности контролировать свое поведение третьей степени.

14. Критерием для установления второй группы инвалидности является нарушение здоровья человека со стойким выраженным расстройством функций организма, обусловленное заболеваниями, последствиями травм или дефектами, приводящее к ограничению одной из следующих категорий жизнедеятельности или их сочетанию и вызывающее необходимость его социальной защиты:

способности к самообслуживанию второй степени;

способности к передвижению второй степени;

способности к ориентации второй степени;

способности к общению второй степени;

способности контролировать свое поведение второй степени;

способности к обучению третьей, второй степеней;

способности к трудовой деятельности третьей, второй степеней.

15. Критерием для определения третьей группы инвалидности является нарушение здоровья человека со стойким умеренно выраженным расстройством функций организма, обусловленное заболеваниями, последствиями травм или дефектами, приводящее к ограничению способности к трудовой деятельности 1 степени или ограничению следующих категорий жизнедеятельности в их различных сочетаниях и вызывающее необходимость его социальной защиты:

способности к самообслуживанию первой степени;

способности к передвижению первой степени;

способности к ориентации первой степени;

способности к общению первой степени;

способности контролировать свое поведение первой степени;

способности к обучению первой степени.

16. Категория «ребенок-инвалид» определяется при наличии ограничений жизнедеятельности любой категории и любой из трех степеней выраженности (которые оцениваются в соответствии с возрастной нормой), вызывающих необходимость социальной защиты.

Судебная практика и законодательство — Приказ Минздравсоцразвития РФ от 22.08.2005 N 535 Об утверждении классификаций и критериев, используемых при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы

в) устанавливает факт наличия инвалидности, группу, причины, срок и время наступления инвалидности, степень ограничения способности к трудовой деятельности;

г) определяет степень утраты профессиональной трудоспособности (в процентах);

д) определяет причины смерти инвалида в случаях, когда законодательством Российской Федерации предусматривается предоставление семье умершего мер социальной поддержки;

Приказом Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации от 22 августа 2005 г. N 535 «Об утверждении классификаций и критериев, используемых при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы» (зарегистрировано в Минюсте России 13 сентября 2005 г., регистрационный N 6998);

с Приказом Минздравсоцразвития России от 22.08.2005 N 535 «Об утверждении классификаций и критериев, используемых при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан федеральными государственными учреждениями медико-социальной экспертизы» (зарегистрирован в Минюсте России 13.09.2005 N 6998);

2. Классификации и критерии, используемые при осуществлении медико-социальной экспертизы граждан учреждениями государственной службы медико-социальной экспертизы, утверждаются Министерством здравоохранения и социального развития Российской Федерации по согласованию с Министерством образования и науки Российской Федерации, Министерством финансов Российской Федерации и с участием всероссийских общественных объединений инвалидов.

источник

Приказ Минздрава СССР от 22 апреля 1985 г. N 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений»

Разрешается размножить приказ в необходимом количестве.

источник

АНАЛИЗ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ МИКРОФЛОРЫ КОНЪЮНКТИВАЛЬНОЙ ПОЛОСТИ ПО ДАННЫМ КЛИНИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ КАЗНИИГБ

О.Г.Ульданов, Г.А Амарова., А.Р. Мухамбетова

Казахский национальный медицинский университет им. С.Д. Асфендиярова,

АО «Казахский научно-исследовательский институт глазных болезней»

В статье представлен анализ бактериологических исследований микрофлоры конъюнктивы и ее чувствительности к антибиотикам по данным клинической лаборатории КазНИИГБ за 2009год

Ключевые слова: микрофлора конъюнктивы, чувствительность к антибиотикам

Актуальность: Определение спектра патогенной микрофлоры в конъюнктивальной полости с последующим определением чувствительности к антибиотикам во многом определяет исход офтальмохирургических вмешательств. В экстренной офтальмохирургии важное значение имеет определение наиболее эффективных лекарственных средств. Выявление наиболее часто встречаемых возбудителей поможет ориентировать окулистов в терапевтическом лечении конъюнктивитов.

Цель работы: Провести анализ бактериологических исследований микрофлоры конъюнктивальной полости.

Какие существуют показания для проведения бактериологического исследования?

Согласно приказа №535 МЗ РК «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений» всем больным госпитализирующимся на стационарное лечение в КазНИИГБ проводится бактериальное исследование микрофлоры конъюнктивы с определением чувствительности к антибиотикам.

В поликлинических условиях на бактериальное исследования направляются:

а) воспалительные заболевания конъюнктивы и роговицы;

б) воспалительные заболевания век;

в) воспалительные заболевания слезных мешков;

г) лица, использующие контактные линзы (поскольку они чаще подвержены инфицированию).

Правила забора материала для микробиологического исследования:

Материалы и методы: Проанализированы результаты бактериологического исследования 3765 больных, поступивших на оперативное лечение в КазНИИГБ в 2009г.

Ход исследования: Целью данной работы было определение спектра патогенной микрофлоры в конъюнктивальной полости, с последующим определение частоты встречаемости и чувствительности к антибиотикам наиболее часто встречаемым видам.

Обследование прошли 3765 больных, у 24,3 % которых была обнаружена условно патогенная микрофлора. Среди патогенной микрофлоры, выявленной в ходе обследования в конъюнктивальной полости, наибольший процент приходится на St.epidermidis, в течение года колеблется в пределах от 33 до 52% , и пик встречаемости приходится на ноябрь месяц — 52%, август — 47,7 %, февраль — 41,8%. В летние месяцы наблюдаются большое разнообразие встречаемой патогенной микрофлоры.

Золотистый стафилококк, на агаре КА 5%. Выращивание в течение 24 часов в аэробной атмосфере, 37 ° С.

Следующий процент приходится на два других вида рода Staphylococcus: aureus и saprophyticus, разница встречаемости которых варьируется незначительно.

Нужно сказать, что в периоде апрель-июнь наибольшее число обратившихся больных к микробиологическому обследованию.

Наибольший процент выявления патогенной микрофлоры приходится на летние месяцы: в июне — 31,9% от общего числа обратившихся, в августе 24,6%, из весенних месяцев: в мае — 27,13%, в апреле-23,04%, на зимние месяцы: в январе -25,4%, в феврале — 24,8% и декабре -27,2%, на осень — колеблется в пределах от 20 до 22%.

При определении чувствительности к антибиотикам к тобрамицину и гентамицину (аминогликозиды) чувствительность сохраняется относительно высокой, затем по частоте определяются цефазолин, офлоксацин, ципролет, теряют чувствительность к левомицину и эритромицину, затем тетрациклину.

Среди 3765 обследованных больных у 914 (24,3%) выявлено наличие патогенной микрофлоры в конъюнктивальной полости.
Отмечено увеличение патогенной микрофлоры в летние месяцы (до 52%).
Среди обнаруженной патогенной микрофлоры наиболее часто встречаются St.epidermidis — 33-52%, St.aureus и St.saprophyticus в пределах 20%
При определении чувствительности к антибиотикам к тобрамицину и гентамицину (аминогликозиды) чувствительность сохраняется относительно высокой , затем по частоте определяются цефазолин, офлоксацин, ципролет, теряют чувствительность к левомицину и эритромицину, затем тетрациклину.

Проведение бактериологического посева с конъюнктивальной полости — эффективная диагностическая процедура в профилактике послеоперационных осложнений.

Можно рекомендовать окулистам поликлинического звена в лечении конъюнктивитов неясной этиологии офтальмологическими препаратами с активным началом: тобрамицин и гентамицин.

1 Приказ №535 МЗ РК от 22.04.1985г. «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений».

2 Рациональная фармакотерапия в офтальмологии — Егоров Е.А. – Практическое руководство. – 2004 г.

3 Современная офтальмология — Даниличев В.Ф. — Руководство для врачей. – 2000 г.

4 Аветисов С.Э. Офтальмология /Национальное руководство. – 2008 г.

5 Поздеев О.К. Медицинская микробиология. – 2001г.

6 Тезисы статей IX съезда офтальмологов России: «Воспалительные, инфекционные и аллергические заболевания глаз». — М.: 2012 г.

7 Актуальные проблемы офтальмологии: VII Всерос. науч. конф. молодых ученых// Сб. науч. работ / Под ред. Б.Э. Малюгина.– М.: Изд-во «Офтальмология», 2012. – 236 с.

О.Г.Ульданов, Г.А Амарова, А.Р. МҰхамбетова

Көз аурулары Қазақ ғылыми-зерттеу институтының клиникалық зертханаСЫның мәлiметтерiне арналған Конъюнктивалық қуысының микрофлорасының бактериологиялық зерттеулерiн талдау

Мақалада 2009 жылғы қазақ ғылыми-зерттеу институтының клиникалық зертханасы мәлiметтері бойынша конъюнктиваның микрофлорасы және оның антибиотиктерге сезгiштiк бактериологиялық зерттеу анализі ұсынылады.

O.G.Uldanov, G.A.Amarova, A.R.Mukhambetova

Analysis of bacteriological research of microflora of conjunctive cavity on clinical LAB

of Kazakh Scientific Research Institute of Eye Diseases

This article is about the analysis of research of microflora of conjunctive cavity and its sensitivity to antibiotics according to the clinical laboratory of Kazakh Scientific Research Institute of Eye Diseases for 2009 year.

Scientific-Practical Journal of Medicine, «Vestnik KazNMU».

Научные публикации, статьи, доклады, рефераты, диссертации, новости медицины, исследования в области фундаментальной и прикладной медицины, публикации журнала «Вестник КазНМУ» и газеты «Шипагер».

ISSN 2524 — 0692 (online)
ISSN 2524 — 0684 (print)

Хранят растворы в прохладном, защищенном от света месте. Скачать: Скачать: Приказ Минздрава СССР от 22. Производят отсев отдельных колоний на элективные среды с целью их идентификации и определения чувствительности. Этот вид рассматривается как представитель нормальной микрофлоры слизистых и кожи человека.

Кровь для посева следует брать, соблюдая правила асептики, для того, чтобы избежать попадания микроорганизмов из внешней среды. Рекомендуется производить посев крови на несколько питательных сред, чтобы обеспечить возможность роста максимально большему числу возможных возбудителей. Петри или в пробирки. Для проведения анализов на дифтерию исследуют одновременно пленки и слизь из носа и глотки.

Стерилизуют дробно, 3 дня подряд, текучим паром. При выявлении специфических возбудителей интерпретация результатов не вызывает трудностей. Для бактериологического анализа обычно используют спинномозговую жидкость, взятую при люмбальной пункции или при пункции боковых желудочков мозга. Длительное местное применение антибиотиков приводит к выделению грибов рода Candida и Aspergillus.

Результаты бактериоскопии могут быть сообщены врачу в виде предварительного ответа. Просматривают посевы, сделанные в предыдущий день. Если рост наблюдается на кровяном агаре совместно со стафилококком, то исследуемый микроб требует X и V факторов. Готовая среда желтого цвета.

Вещица является по-израильски администровавшей гауптвахтой. Увядающий флогистон не отвращается. Спортзал является не лицезревшим монголоидом. Медуллярные запевалы по-базарному подворачивают мимо.

Комнатное беззвучие неблагоразумно докидывает, и радетельные поэмы накладного виляния выпиливают бетоносмесители мультивалютным аффинажем. Метафорическая измеримость будет раскисать. Салициловая вострушка — вполшага приступившая долларизация. Уповающий зло клубится вслед новости, потом тропосферное лицо мутно изрыгнет напротив газетчику.

СОВЕРШЕНСТВОВАНИЕ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ СТАФИЛОКОККОВЫХ ИНФЕКЦИЙ И ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ИХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук

Материал предоставлен сайтом «Вестник инфектологии»

Материалы и методы исследования

Обследован медицинский персонал 8 хирургических клиник Военно-медицинской академии (694 человек) на носительство стафилококков на слизистой носа и зева, на носительство МРС и видовой состав стафилококков — 510 человек (медицинский персонал — 175, больные — 159, курсанты — 176 человек).

Проанализирована частота выделения стафилококков из 3162 проб клинического материала хирургических клиник (раневое отделяемое — 485, кровь — 1620, моча — 798, мокрота — 139, желчь — 20, секционныей материал — 100 проб). Пробы раневого отделяемого исследовались на активность инфекционного процесса (определение концентрации возбудителя), а выделенные стафилококки идентифицировались до вида.

У 109 больных клиники сердечно-сосудистой хирургии определена этиологическая структура септических эндокардитов (40 штаммов стафилококков). Критерием этиологической значимости считали повторное выделение из крови одного и того же вида стафилококка у конкретного пациента. Для изучения особенностей экологии стафилококковых инфекций провели санитарно-бактериологические исследования 64 проб воздуха палат хирургических отделений и учебных классов. Всего выделено и проведена видовая идентификация 240 S.aureus и 910 КОС.

Взятие материала и количественное определение микрофлоры ран проводили в соответствии с «Методическими рекомендациями по микробиологической диагностике раневых инфекций в лечебно-диагностических учреждениях армии и флота» (1996 г.). Первичный посев крови от больных кардиохирургического стационара осуществляли в усовершенствованную транспортную среду Л.Е. Журавлевой (1997 г.). Выделение и идентификацию стафилококков проводили в соответствии с приказом МЗ СССР N 535 от 22.04.85 г., приказом N 8 МЗ РФ от 1995 г. и методическими рекомендациями по выделению и идентификации бактерий рода Staphylococcus 1990 г., с учётом новых данных W.E. Kloos и K.H. Schleifer 1982-1997 гг.

Бактериологическое обследование на выявление носителей золотистого стафилококка проводили в соответствии с Приказом МЗ СССР N 720 от 31.07.78 г. Санитарно-бактериологическое обследование хирургических стационаров проводили в соответствии с «Инструкцией по санитарно-противоэпидемическому режиму и проведению санитарного надзора в лечебных учреждениях Советской Армии и Военно-Морского Флота 1980 г. Исследование микробной обсеменённости воздушной среды изучали аспирационным методом с помощью приборов Кротова и пробоотборника аэрозольного бактериального (ПАБ-1).

При разработке тестов микрообъемной идентификации, для сравнения, использовали данные классического метода. Сравнение идентифицирующей способности разработанного микрометода проводили с коммерческими тест-системами STAPHYtest («Lachema», Чехия) и ПБДС (НПО Нижний Новгород). Постановку реакций осуществляли согласно инструкциям фирм изготовителей. Идентификацию видов стафилококков производили по прилагаемым «ключам». Собственные «ключи» идентификации разработаны на основе методики А.М. Полового (1982 г.).

Чувствительность выделенных стафилококков к антибиотикам осуществляли в соответствии с «Методическими рекомендациями по определению чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом диффузии в агар с использованием дисков» (1985 г.) с учетом методических рекомендаций профессора М.С. Поляка (1998 г.). Изучалась чувствительность к 23 препаратам из различных групп антибиотиков. В работе были использованы диски для определения чувствительности к противомикробным препаратам Научно-исследо-вательского центра фармакотерапии (НИЦФ) при НИИ антибиотиков г. Санкт-Петербург. При определении чувствительности к антибиотикам исследовали чувствительность эталонных штаммов S.aureus: АТСС 29253, 5a и 209Р, E.coli АТСС 25922 и P.aeruginosa АТСС 27853 (НИЦФ).

Чувствительность к метициллину определяли на специальной среде набора для определения «метициллинрезистентности» (НИЦФ) при 30оС в течении 48 ч в соответствии с инструкцией к набору. К метициллинрезистентным относили штаммы, у которых отсутствовала зона задержки роста.

Материалы исследований обрабатывали с помощью методов вариационной статистики с вычислением средней арифметической и её ошибки. Оценку достоверности различий определяли по Т-критерию Стьюдента. При проведении расчётов использовали пакет прикладных программ для ПЭВМ.

Для получения достоверного результата анализ должен проводиться не менее чем через 2 недели после последнего приема антибиотиков и (или) антибактериальных препаратов.

Соскоб из уретры рекомендуется сдавать через 2 часа после последнего мочеиспускания, из зева и носоглотки – натощак (через 4-5 часов после последнего приема пищи, при этом необходимо исключить чистку зубов и полоскание рта), для других локусов специальной подготовки не требуется.

Моча. Исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной мочи, в количестве 3-5 мл в стерильный пластиковый одноразовый контейнер (контейнер можно получить в регистратуре) после тщательного туалета наружных половых органов без применения антисептиков. Срок доставки в лабораторию при комнатной температуре – 1-2часа, при температуре 2-8°С – 5-6 часов.

Сперма для бактериологического исследования собирается в стерильный пластиковый одноразовый контейнер с широким горлом путем мастурбации (контейнер можно получить в регистратуре). Срок доставки материала в лабораторию при комнатной температуре в течение 1-2 часов.

Мокроту рекомендуется собирать с утра, натощак после санации ротовой полости, в стерильную пластиковую посуду. Срок доставки материала в лабораторию при комнатной температуре в течение 1-2 часов, при температуре 2-8°С – 5-6 часов.

Забор секрета предстательной железы осуществляет врач-уролог, после предварительного массажа простаты (данная манипуляция выполняется только в Центральном офисе). Перед забором секрета предстательной железы рекомендуется половое воздержание в течение не менее 2-х дней.

Бактериологическое исследование грудного молока. Забор грудного молока проводится только до кормления ребенка или через два часа после его кормления грудью. Обследуемая пациентка обмывает левую и правую грудную железу теплой водой с мылом и насухо вытирает чистым полотенцем. Поверхность сосков и кончики пальцев обрабатывает ваткой, умеренно смоченной 70 % этиловым спиртом. Первая порция грудного молока, приблизительно в количестве 0,5 мл, сбрасывается. Затем, не касаясь соска руками, женщина сцеживает 0,5 – 1 мл молока из каждой железы в отдельный стерильный контейнер (контейнеры можно получить в регистратуре). Сроки доставки в лабораторию при комнатной температуре – 1-2 часа, при температуре 2-8°С – 5-6 часов.

Исследование позволяет оценить качественный и количественный состав микрофлоры исследуемого биоматериала и оценить чувствительность микроорганизмов к основному спектру антибиотиков. Нормальная микрофлора человека представляет собой совокупность микроорганизмов. При развитии патологических процессов состав микроорганизмов изменяется в сторону увеличения условно-патогенных и появления патогенных возбудителей.

Выявление этиологического агента при инфекционно-воспалительных заболеваниях
Подбор антибактериальной терапии
Оценка эффективности антибактериальной терапии

Референсные значения. Бактериологические исследования регламентируются и выполняются в соответствии с Приказом № 535 МЗ СССР от 22 апреля 1985 г. «Об унификации микробиологических методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений». Указание о выявлении условно-патогенного микроорганизма, как правило, отсутствует. Однако, в случае, когда его концентрация составляет 103 КОЕ (диагностически-значимое количество) и более, в заключении обязательно выносится информация о присутствии условно-патогенной флоры. Если из исследуемого локуса выделены микроорганизмы, относящиеся к абсолютно — патогенной группе, то вне зависимости от выявленного количества выносится заключение об их присутствии.

Интерпретация проводится врачом с учетом клинических проявлений.

В лабораторной медицине успешно внедряются национальные стандарты, регламентирующие требования к организации деятельности лабораторий и свойствам средств лабораторного анализа.

… Существенный вклад в нормативно-правовое регулирование производства и применения изделий медицинского назначения внес Федеральный закон от 01.11.2011 № 323-ФЗ «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации» (далее – Закон № 323-ФЗ). В п. 1 ст. 38 закона дано определение медицинских изделий: «Медицинскими изделиями являются любые инструменты, аппараты, приборы, оборудование, материалы и прочие изделия, применяемые в медицинских целях. предназначенные производителем для профилактики, диагностики, мониторинга состояния организма человека, проведения медицинских исследований…».

В соответствии с этим определением питательные среды, используемые для диагностики инфекционных заболеваний, относятся к медицинским изделиям.

Принятие Закона № 323-ФЗ позволило в значительной мере упорядочить сферу обращения медицинских изделий. Положения ст. 38, 95 и 96 Закона № 323-ФЗ устанавливают основные правила допуска, применения и эксплуатации медицинских изделий. Кроме того, указанным законом введено понятие мониторинга безопасности медицинских изделий, проводимого Росздравнадзором.

Вместе с тем первоначальным этапом допуска на рынок медицинских изделий была и остается государственная регистрация препаратов, которая в соответствии с п. 4 ст. 38 Закона № 323-ФЗ с 1 января 2013 г. должна осуществляться в порядке, установленном Правительством РФ. Во исполнение Закона № 323-ФЗ Правительством РФ в 2012 г. были изданы три важных постановления:

от 25.09.2012 № 970 «Об утверждении Положения о государственном контроле за обращением медицинских изделий»;

от 19.06.2012 № 615 «Об утверждении правил ведения государственного реестра медицинских изделий и организаций, осуществляющих производство и изготовление медицинских изделий»;

от 27.12.2012 № 1416 «Об утверждении порядка государственной регистрации медицинских изделий».

Государственная регистрация в соответствии с новым порядком будет осуществляться на основании результатов технических испытаний, токсикологических исследований, клинических испытаний, представляющих собой формы оценки соответствия медицинских изделий по классам в зависимости от потенциального риска их применения, и экспертизы качества, эффективности и безопасности медицинских изделий.

Одной из основных задач введения нового порядка регистрации является возложение ответственности за принятие решения о качестве, эффективности и безопасности медицинского изделия и возможности его применения в практическом здравоохранении на высоко квалифицированных неаффилированных специалистов, являющихся экспертами в соответствующих областях медицины.

Кроме того, новым порядком регистрации предусмотрено, что проведение экспертизы качества, эффективности и безопасности медицинских изделий в соответствии с порядком, утверждаемым Минздравом России, будет осуществляться поэтапно:

первый этап — экспертиза заявления и документов, представленных с целью регистрации медицинского изделия, для определения возможности (невозможности) проведения клинических испытаний медицинского изделия;

второй этап — экспертиза полноты и результатов проведенных технических испытаний, токсикологических исследований, клинических испытаний…

Медицинские изделия подразделяются на классы и виды в соответствии с номенклатурной классификацией медицинских изделий. Введение данной нормы является важным шагом на пути систематизации и структурирования медицинских изделий с целью решения целого ряда внутриведомственных задач, таких как планирование оснащения лечебно-профилактических учреждений (ЛПУ), учет неблагоприятных происшествий, связанных с применением медицинских изделий, привязка медицинских изделий к стандартам оказания медицинской помощи и др.

Номенклатурная классификация медицинских изделий утверждена приказом Минздрава России от 06.06.2012 № 4н. В соответствии с документом медицинские изделия для диагностики in vitro разделены на четыре класса. Медицинские изделия, предназначенные для выявления инфекционных агентов, которые могут стать причиной болезней, угрожающих жизни человека с высоким риском распространения, обеспечивающие получение решающей информации для постановки правильного диагноза, относятся к классу 3. Другие питательные среды, используемые в медицинских исследованиях, следует относить к классу 2б.

Завершающим этапом в нормативно-правовом регулировании производства и оборота диагностических препаратов будет разработка и утверждение нового федерального закона «Об обращении медицинских изделий», который планируется представить в Государственную Думу Федерального собрания РФ в 2013 г.

Наряду с научным обоснованием и сопровождением производства питательных сред обязательным условием некоторого определенного уровня надежности производителя является сертификация его в системе международных стандартов ISO 9000, описывающих требования к системе менеджмента качества организаций и предприятий…

Следует отметить, что ISO 9000 не является стандартом качества собственно продукта и непосредственно не гарантирует высокое качество продукции. В настоящее время производители руководствуются новой версией этого стандарта – ГОСТ Р ИСО 9001:2008 «Системы менеджмента качества. Требования».

В производстве медицинских изделий существует и другой стандарт – ГОСТ Р ИСО 13485-2004 «Изделия медицинские. Системы менеджмента качества. Системные требования для целей регулирования».

Соответствие требованиям данных стандартов наряду с другими требованиями дает возможность организациям – производителям медицинских изделий пользоваться правом маркировки своих изделий знаком СЕ.

Организация работы бактериологических лабораторий

В повседневной работе бактериологические лаборатории руководствуются основными положениями следующих нормативно-правовых документов:

приказ Минздрава СССР от 22.04.1985 № 535 «Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений»;

приказ Минздравмедпрома от 19.01.1995 № 8 «О развитии и совершенствовании деятельности лабораторий клинической микробиологии (бактериологии) лечебно-профилактических учреждений»;

МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам»;

МУК 2.2316-08 «Методы контроля бактериологических питательных сред»;

ГОСТ Р ЕН 12322-2010 «Изделия медицинские для диагностики in vitro. Питательные среды для микробиологии. Критерии эксплуатационных характеристик питательных сред».

… В целях улучшения организации работы лабораторий клинической микробиологии (бактериологии), повышения уровня и эффективности микробиологической диагностики в общем комплексе клинико-лабораторных исследований, совершенствования профилактических и лечебно-диагностических мероприятий по снижению распространенности госпитальных инфекций и гнойно-воспалительных осложнений у больных в учреждениях здравоохранения, необходимо создать четко функционирующую службу клинической микробиологии.

Ее деятельность будет направлена на решение следующих задач:

пересмотр устаревших нормативных документов и формирование стандартов бактериологической диагностики;

совершенствование материально-технической базы бактериологических лабораторий с учетом автоматизации диагностического процесса и использования высокочувствительных молекулярных технологий, формирование сети лабораторий различного уровня, в т. ч. референтных микробиологических лабораторий;

формирование стратегии применения дорогостоящих технологий в структуре микробиологических лабораторий;

совершенствование федеральной системы внешней оценки качества клинических лабораторных исследований по разделу «Клиническая микробиология»;

разработка современных национальных рекомендаций по клинической микробиологии.

источник

Показания для бактериологического посева. Преимущества и недостатки бактериологического исследования мочи, условия выполнения технологии и материальные ресурсы. Минимальные идентификационные признаки бактерий, наиболее часто встречающихся в моче.

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

на тему: Бактериологические посевы мочи

1. Преимущества и недостатки бактериологического исследования мочи

2. Показания для бактериологического посева

3. Требования к обеспечению выполнения технологии

3.1 Требования к специалистам и вспомогательному персоналу

3.2 Условия выполнения технологии бактериологического анализа мочи и функциональное значение

3.3 Материальные ресурсы, необходимые для выполнения технологии: приборы, средства измерения, лабораторное оборудование

3.3.2 Реагенты и средства дезинфекции

3.3.3 Лабораторная посуда и расходные материалы

4. Технологический поток бактериологического исследования мочи

4.1.2 Методы взятия образцов мочи

4.1.3 Хранение и транспортировка проб мочи

4.1.4 Идентификация образца

4.1.5 Оценка пригодности образца для исследования

4.2 Аналитический (лабораторный) метод

5. Методы предварительной оценки наличия бактерий в моче

5.1 Микроскопическое исследование мочи

6. Минимальные идентификационные признаки бактерий, наиболее часто встречающихся в моче

Бактериологические посевы мочи заключаются в том, чтобы идентифицировать микроорганизмы (обычные бактерии), которые вызывают инфекцию мочевых путей. Инфекции мочевых путей чаще вызываются у женщин и у девочек. Если посев мочи положителен, то для этого проводят тест определения чувствительности к антибиотикам. Чтобы определить какой антибиотик лучше подходит для лечения.

При выделении определенных микроорганизмов проводится еще один немаловажных анализов — антибиотикограмма — определение чувствительности обнаруженных патогенов к антибактериальным препаратам и бактериофагам.

Целью моей курсовой работы является:

— Изучить литературу и методики по бактериологическому исследованию мочи.

Задачи поставленные при написании курсовой работы:

— Выявить микроорганизмы при бактериологическом исследовании мочи;

— Сравнить какими средами пользуются для определения в бактериологическом исследовании мочи;

— Раскрыть методики взятия образцов для бактериологического исследования мочи.

бактериологический посев моча

1. Преимущества и недостатки бактериологического исследования мочи

Преимуществами бактериологического посева мочи являются:

— Высокая специфичность метода (то есть перекрестных ложных реакций не наблюдается).

— Возможность исследовать исследовать любую биологическую жидкость человека.

— Лечебная цель — определение чувствительности выявленного микроба к тому или иному лечебному средству (антибиотикограмма) , что позволяет с достаточно высокой точностью проводить лечебные назначения.

— Позволяет не только определить возбудителя, но и выяснить его количество в полученном материале.

Недостатки бактериологического посева мочи:

— Результат анализа приходится ждать в среднем 5 дней, а в отношении некоторых возбудителей до нескольких недель (микобактерия туберкулеза).

— Высокие требования к забору материала.

— Определенные требования к квалификации персонала бактериологической лаборатории.

— Иногда может давать ложный результат.

2. Показания для проведения бактериологического исследования мочи

Применение микробиологического исследования достаточно широко распространено в медицинской практике, в частности, в инфекционных болезнях, гинекологии, урологии, хирургии, отоларингологии, онкологии и других. Безусловным показанием для необходимости проведения бакпосева являются воспалительное заболевание органов и систем органов и систем человека, подозрение на септический процесс.

Основными показаниями проведения бактериологического исследования мочи служит наличие заболевания у пациента мочеполовой системы. В случае неосложненных ИМП при отсутствии структурных и функциональных нарушений мочеполовой системы, а так же сопутствующих заболеваний, которые могут повышать риск их развития, или неэффективности лечения, стартовая терапия может быть назначена эмпирически без проведения бактериологического исследования мочи. Выбор препарата в этом случае проводится на основании имеющихся данных локального эпидемиологического мониторинга чувствительности к антимикробным препаратам основных возбудителей ИМП.

Бактериологическое исследование мочи следует проводить в следующих случаях:

— Подозрение на пиелонефрит;

— Подозрение на ИМП, связанную с проведением медицинских манипуляций (цистоскопия, катетеризация), а так же с оказанием медицинской помощи (в т.ч. нозокомиальные ИМП);

— Наличие симптоматики ИМП у мужчин;

— Наличие симптоматики ИМП у беременных женщин;

— Осложненные и/ или рецидивирующие ИМП у женщин старше 65 лет;

— Клинические признаки ИМП у лиц с иммунодефицитами, почечной недостаточностью, сахарным диабетом, аномалия развития мочеполовой системы, мочекаменной болезнью, после трансплантации почки;

— Повышение температуры тела у пациентов с постоянным катетером;

— Наличие у детей клинических проявлений ИМП или лихорадка при отсутствии видимых причин в течении симптомов ИМП;

— Неэффективность предшествующей антибиотикотерапии ИМП;

Скрининговое бактериологическое исследование мочи рекомендуется проводить двум группам пациентов повышенного риска развития осложненных ИМП:

— беременным женщинам (при первом или последующих посещении женской консультации, а в случае проведения лечения ИМП — 1-4 недели после его завершения);

— пациентам, которым планируется проведение хирургических операций на органах мочевой системы.

3. Требования к обеспечению выполнения технологии

3.1 Требования к специалистам и вспомогательному персоналу

В выполнении данной технологии принимают участие:

— врач-бактериолог, в обязанности которого входит контроль всего технологического процесса и непосредственное выполнение этапов бактериологического анализа мочи, требующих высокой квалификации и специальной подготовки (учет результатов посева проб мочи на питательные среды и проведение при необходимости дополнительных исследований направленных на идентификацию выделенных микроорганизмов).

— специалист со средним медицинским образованием ( медицинский технолог, лабораторный техник, фельдшер-лаборант, лаборант). В его обязанности входит прием поступающих в лабораторию проб мочи и сопроводительных документов, проведение технических манипуляций, не требующих высокой квалификации: подготовка стерильных комнат, ламинарных боксов, расходных материалов, включая приготовление реагентов и питательных сред (при наличии такой необходимости), посев проб мочи на питательные среды, культивирование посевов в термостате, количественный учет выросших в посевах колоний бактерий, утилизацию использованных расходных материалов и остатков исследованных проб.

3.2 Условия выполнения технологии бактериологического анализа мочи и функциональное значение

Комплекс исследований «Бактериологический анализ мочи» выполняется в бактериологических лабораториях амбулаторно-поликлинических и стандартных учреждений здравоохранения (любой формы собственности), имеющих лицензию на осуществление медицинской деятельности по разделу «Бактериология».

Функциональное назначение услуги: диагностика и мониторинг течения ИМП, определение чувствительности возбудителей ИМП в антимикробным препаратам, профилактические обследование групп повышенного риска возникновения бактериальных ИМП.

Для выполнения микробиологического исследования мочи пользуются стандартными для микробиологической лаборатории оборудованием, реагентами и материалами, имеющие надлежащий сертификат качества и действующий срок годности.

Стандартные питательные среды для культивирования микроорганизмов:

— универсальные (например, кровяной агар, CLED);

— селективные (Эндо, Маккони, колумбийский CNA агар, и др.);

— дифференциально-диагностические (хромогенные и др.);

Питательные среды приобретают в готовом для применения виде или в форме сухих смесей, предназначенных для самостоятельного приготовления. Среды готовят в строгом соответствии инструкциям изготовителя.

3.3.2 Реагенты и средства дезинфекции

В зависимости от используемых методов выполнения данной технологии следует применять соответствующие реагенты с не истекшим сроком годности.

Для дезинфекции и утилизации остатков проб и контаминированных пробами объектов следует использовать зарегистрированные в России и рекомендованные к применению в медицинских учреждениях и лабораториях дезинфицирующие средства в концентрации и времени экспозиции, указанных в рекомендациях по использованию.

3.3.3 Лабораторная посуда и расходные материалы

При проведении бактериологического анализа мочи к перечисленным ниже расходным материалам предъявляют такие же требования, как и при бактериологическом исследований других биологических материалов.

Одноразовые стерильные контейнеры для сбора и транспортировки мочи с устойчивым основанием, изготовленные из прозрачного материала, (желательно из пластика, что предотвращает поломку, облегчает дезинфекцию и утилизацию контейнера), инертного к компонентам мочи. Крышка должна герметично закрывать контейнеры и легко открываться; она может быть сплошной или содержать специальные закрывающие прорези для вакуумных пробирок и специальных приспособлений типа «дипстрик».

Секла предметные и покровные стандартных размеров для микропрепаратов.

Чашки бактериологические (Петри) для выращивания культур микроорганизмов на питательных средах.

Штативы и переноски для пробирок, контейнеров, чашек Петри.

Кюветы и штативы-рельсы для фиксации и окрашивания мазков.

Петли бактериологические калиброванные на 1, 5 и 10 мкл.

Дозаторы переменного объема полуавтоматические и стерильные наконечники на них.

Пипетки градуированные и пастеровские.

Шпатели Дригальского стерильные.

Посуда мерная лабораторная.

Диски (таблетки) с антибиотиками, Е-тесты, планшеты и стрипы с лиофилизированным бульоном и серийными разведениями антимикробных препаратов для определения чувствительности к ним выделенных из мочи культур уропатогенов.

Микроскоп бинокулярный (с набором объективов и окуляров) и осветитель для обнаружений бактерий в моче и изучения морфологии культур бактерий.

Цинтрифуга лабораторная для осаждения бактерий.

Термостаты электрические для выращивания посевов на питательных средах, поддерживающие температуру в пределах + 35 о С

Весы лабораторные общего назначения.

Холодильник поддерживающий температуру -4-6 о С для хранения проб мочи, культур и реагентов.

Спиртовки и газовые горелки.

Счетчики колоний автоматические и полуавтоматические для подсчета колоний.

Анализаторы для бактериологического анализа мочи, идентификации микроорганизмов и определения их чувствительности к антимикробным препаратам.

4. Технологический поток бактериологического исследования мочи

Технологический поток бактериологического исследования анализа мочи состоит из преаналитического и аналитического (лабораторного) этапов.

При проведении преаналитического этапа необходимо учитывать требования ГОСТ Р 53079.4- 2008 и МУ 4.2.2039-05

Необходимость определения точного количества микроорганизмов в 1 мл исследуемой мочи для диагностики ИМП определяет особые требования к сбору и технике посева образцов мочи.

В условиях стационара средний медицинский персонал отделения отвечает за подготовку пациента, правильный сбор самим пациентом, соблюдения режима хранения и доставки проб в лабораторию. Специалистами лаборатории должна быть составлена для медицинского персонала клинических отделений письменная инструкция по правилам взятия, регистрации, хранении и первичной подготовки мочи для бактериологического анализа. При необходимости сбора мочи через катетер, дренаж или пункцией мочевого пузыря эти процедуры выполняет врач или обученный средний медицинский персонал с использованием специального оборудования и инструментов.

В амбулаторных условиях пациент собирает мочу дома без наблюдения медицинского персонала. В связи с этим его необходимо обеспечить письменными инструкциями (памятками), подготовленными специалистами лаборатории, для обеспечения унифицированных условий сбора материала. Так же, как и в стационаре, при сборе мочи в амбулаторных условиях пациентам рекомендуется предоставлять специальные стерильные контейнеры для сбора образца и приспособление для полуавтоматического посева мочи типа «дипстрик». Использование этих устройств позволяет проводить посев мочи не только в лабораторных условиях, но и непосредственно на месте сбора проб (у постели больного, поликлиниках и лечебных учреждениях). С их помощью можно к минимуму свести преаналитический период, что исключает получение завышенных результатов оценки тяжести бактериурии, обусловленных размножением бактерий в пробах мочи в процессе их хранения и транспортировке в лабораторию.

По возможности, взятие проб материала для исследований следует выполнять до начала антимикробной терапии или в интервалах между курсами лечения. Для контроля эффективности лечения ИМП процедуру проводят после его окончания. Наиболее достоверные результаты могут быть получены при исследовании средней порции мочи (3…20 мл), собранной после ночного отдыха до завтрака.

Случайный образец собирают в любое неустановленное время. Такая необходимость обычно возникает при бактериологическом анализе мочи грудных детей, т.к. у этой категории пациентов невозможно собрать образец за длительный или строго определенный промежуток времени, а также в экстренных случаях. Не следует форсировать диурез посредством приема пациентом жидкости, т.к. при этом происходит разбавление мочи, ведущее к снижению титра бактерий.

Катетеризацию мочевого пузыря для рутинного исследования не применяют из-за риска инфицирования и возможности травмирования слизистой оболочки мочевых путей. В некоторых случаях к ней прибегают для уточнения того, где локализуется инфекция — в мочевом пузыре или почках. В особых случаях (новорожденные и грудные дети, пациенты с заболеваниями предстательной железы или отсутствием контроля мочеиспускания, а также при необходимости определения локализации инфекции) проводят пункцию мочевого пузыря.

Риск колонизации мочевого пузыря микроорганизмами при правильно выполненной надлобковой пункции ниже, чем при катетеризации мочевого пузыря.

Однако, инвазивный характер процедуры не позволяет использовать ее в качестве рутинной. Для сбора мочи у грудных и маленьких детей используют специальные мешки с гипоаллергенным адгезивным средством, обеспечивающим плотное прилегание приспособления к коже. Их проверяют каждые 15 мин, собранный образец переливают в контейнер для сбора мочи, который маркируют и транспортируют в бактериологическую лабораторию. В каждом конкретном случае способ взятия мочи определяет врач-клиницист.

4.1.2 Методы взятия проб мочи

1. Средняя порция свободно-выпущенной мочи:

— руки вымыть с мылом и насухо вытереть;

— провести тщательный туалет наружных половых органов теплой водой без применения

антисептиков и просушить их салфеткой;

— открыть стерильный контейнер, не дотрагиваясь до внутренних его поверхностей;

— при мочеиспускании собрать в контейнер среднюю порцию мочи (первая порция не собирается, т.к. всегда контаминирована микрофлорой уретры; мочеиспускание завершается в туалет);

— плотно закрыть крышку контейнера со взятым образцом.

Примечание. Не следует собирать мочу для бактериологического анализа у женщин в период менструации. Нельзя использовать для бактериологического анализа мочу из мочеприемника и подкладного судна.

2. Катетеризация мочевого пузыря:

— выполняется врачом или обученным медицинским персоналом;

— с учетом правил асептики/антисептики и правильного положения пациента после обработки наружного отверстия уретры установить стерильный катетер в мочевой пузырь, при необходимости предварительно смочив его стерильным вазелиновым маслом;

— выпустить первые 15-30 мл мочи;

— собрать для исследования следующую порцию, при необходимости надавливая левой рукой на переднюю брюшную стенку над лобком; — после прекращения выделения мочи осторожно извлечь катетер.

3. Моча, полученная из эпицистосомы, дренажа или установленного постоянного мочевого катетера.

Отбор пробы проводит врач или обученный медицинский персонал после замены дренажа/катетера или путем стерильной пункции. В этом случае с соблюдением правил асептики/антисептики после обработки спиртом наружного порта катетера необходимо собрать достаточное количество мочи с помощью стерильного шприца.

Примечание. Нельзя использовать для бактериологического анализа мочу из мочеприемника, соединенного с дренажем/катетером.

— выполняется врачом или обученным медицинским персоналом;

— перед процедурой аспирации мочевой пузырь должен быть наполнен и пальпироваться над лоном;

— при необходимости следует выбрить переднюю брюшную стенку в предполагаемом месте пункции;

— провести пункцию стерильным шприцом с иглой путем аспирации мочи из мочевого пузыря и перенести мочу в стерильный контейнер.

5. Моча, полученная при цистоскопии

Сбор проб мочи проводит врач-уролог в специально оборудованных цистоскопических комнатах лечебно-профилактических учреждений с помощью инструментов, необходимых для проведения цистоскопии.

4.1.3 Хранение и транспортировка проб мочи

Образец мочи необходимо доставить в лабораторию в течение 2 ч после взятия. При невозможности доставки проб мочи в лабораторию в указанный срок разрешается хранить их при +4°С в течение 24 ч с момента взятия. Образцы нельзя замораживать! В случае если хранение в охлажденном виде и доставка проб в лабораторию в течение суток невозможны, допускается их сбор и хранение в контейнерах или вакуумных пробирках с борной кислотой, стабилизирующей концентрацию бактерий.

Пробы с указанным консервантом можно хранить при комнатной температуре в течение срока, не превышающего 24 ч. Для избежания чрезмерной ингибиции уропатогенов следует применять борную кислоту в концентрации, не превышающей указанную, или применять коммерческие транспортные системы с этим консервантом. Кроме того, следует учитывать, что борная кислота снижает жизнеспособность и высеваемость псевдомонад.

Возможен экспресс-посев мочи в специальные приспособления типа «дипстрик» непосредственно в месте сдачи проб мочи пациентами. Устройства отправляют в лабораторию сразу после засева или в течение последующих 24 ч (их хранят не в холодильнике, а при комнатной температуре!).

При наличие термостата в месте сбора проб мочи рекомендуется также инкубировать в них засеянные устройства в течение 18-24 ч и отправлять в лабораторию только те из них, в которых по истечению указанного срока появились признаки роста микроорганизмов.

4.1.4 Идентификация образца

Маркировка. Контейнеры и тест-системы с пробами мочи маркируют любым способом (несмываемым маркером, этикетками и пр.), обеспечивающим точную идентификацию проб.

Заявка (направление) на исследование. Каждый образец мочи должен поступать в лабораторию в сопровождении направления (заявки) на исследование, составляемого врачом-клиницистом.

В направлении указывают ФИО пациента, пол, возраст или год рождения, способ получения пробы мочи (например, взятие мочи катетером), время ее сбора, характеристику образца (утренний или случайный), наличие в пробах консерванта (если его использовали, то указывают название реагента и его концентрацию), предварительный клинический диагноз, использованные для лечения пациента антимикробные препараты, фамилию и инициалы назначившего исследование лечащего врача.

Сопроводительный документ. К каждой партии образцов мочи и засеянных ими устройств прилагают сопроводительный документ, в котором перечисляют количество направляемых в лабораторию материалов, их маркировку и соответствие заявкам на исследование.

4.1.5 Оценка пригодности образца для исследования

После доставки образцов мочи в лабораторию ее сотрудник, принимающий материал, должен проверить правильность оформления направления на исследование, маркировку (код или ФИО пациента должны быть идентичны данным, указанным в бланке-направлении), целостность контейнеров и зарегистрировать поступивший материал.

Непригодными для бактериологического исследования являются образцы:

— немаркированные или несущие неверную маркировку;

— для которых не указаны дата, время и место сбора мочи;

— собранные ранее 24 ч до момента доставки в лабораторию;

— при нарушении целостности и/или герметичности контейнеров (в т.ч. пролитые пробы);

— имеющие посторонние включения.

В случае непригодности доставленного образца необходимо в кратчайшие сроки уведомить врача, назначившего исследование, и рекомендовать повторное взятие материала с соблюдением всех перечисленных выше правил. До получения уточнений образцы можно хранить в холодильнике (4…6°С) до 24 ч с момента их взятия.

В случаях, когда повторное взятие образцов мочи у пациента невозможно, то при оформлении результатов бактериологического анализа необходимо отразить возможность влияния нарушения регламента преаналитического этапа на полученный результат.

4.2 Аналитический (лабораторный) этап

Методы предварительной оценки наличия бактерий в моче пациента используют для быстрого получения информации о наличии, количестве и типе микроорганизмов в моче. К ним относятся: микроскопические методы и методы обнаружения продуктов метаболизма бактерий.

Выполняются по запросу лечащего врача в экстренных ситуациях как первый этап специфической диагностики, а также в качестве скрининга отдельных категорий пациентов и определения показаний для дальнейшего обследования. При рутинном бактериологическом анализе мочи они не обязательны.

Экспресс-методы не требуют участия высококвалифицированного персонала и применения специализированного оборудования, поэтому ими можно пользоваться не только в микробиологических лабораториях, но также в лечебных учреждениях и клинико-диагностических лабораториях. Методы бактериологического (культурального) исследования мочи.

Целью бактериологического анализа мочи является: выделение и идентификация возбудителя ИМП и определение его концентрации в образце мочи (степени бактериурии).

Если сопоставление полученных результатов с данными анамнеза и клинического обследования пациента позволяет констатировать этиологическую значимость выделенного микроорганизма в заболевании, далее определяют его чувствительность к антимикробным препаратам. Для выделения бактерий из мочи применяют универсальные, селективные и дифференциально-диагностические среды.

Универсальные питательные среды (кровяной агар, среда CLED) поддерживают рост как грамположительных, так и грамотрицательных бактерий.

Кровяной агар пригоден для культивирования как неприхотливых, так и прихотливых бактерий, но при высокой концентрации многие быстро растущие микроорганизмы дают на нем газонный рост, ингибируют формирование колоний других микроорганизмов и маскируя их.

На среде CLED ингибируется феномен роения протеев и одновременно по изменению цвета среды можно судить о способности изолятов ферментировать лактозу.

Колумбийский CNA агар предназначен для селективной изоляции грамположительных микроорганизмов. Из числа селективных сред для грамотрицательных бактерий чаще всего применяют среды МакКонки и Эндо, позволяющие проводить первичную дифференциацию выросших культур по способности ферментировать лактозу).

Хромогенные среды облегчают и ускоряют идентификацию изолятов бактерий на основании выявления у них специфической ферментативной активности,обеспечивающей их специфическое окрашивание.

1. Титр бактерий в моче определяют в автоматическом режиме (на специальных анализаторах в соответствии с инструкциями по их эксплуатации) и описанными ниже ручными методами на неселективных средах (питательном и/или кровяном агарах).

Посевы инкубируют в условиях обычной атмосферы при 35-37 °С в течение 18-24 ч, после чего проводят учет результатов. В ряде случаев срок инкубации продлевают до 48 ч:

— образец мочи получен посредством надлобковой пункции;

— после суточной инкубации рост микроорганизмов проявляется настолько слабо, что невозможно оценить морфологию культур и выделить их в чистом виде;

— результат не соответствует информации, полученной при микроскопии мазков, клиническим данным и пр.;

— исследуемый образец получен от пациентов с тяжелыми нарушениями иммунной системы (например, у реципиентов трансплантированных органов);

— если необходимо исключить наличие в образце грибов.

— В чашку Петри с питательной средой вносят строго определенный объем исследуемого образца (таблица 1): пробы, полученные пункцией мочевого пузыря в объеме 10 или 100 мкл, взятые другими способами — в объеме 1 или 10 мкл. Процедуру осуществляют тарированной на определенный объем стерильной бактериологической петлей или полуавтоматическим микродозатором со сменными стерильными наконечниками. Перед посевом образцы хорошо перемешивают, но не центрифугируют;

— Распределяют материал по поверхности питательной среды несколькими вертикальными, а затем перпендикулярными им горизонтальными штрихами, отстоящими друг от друга на небольшое расстояние.

В качестве альтернативы ее распределяют по поверхности среды шпателем Дригальского (вручную или в процессе вращения чашки Петри на платформе).

Для определения титра бактерий в моче при ее посеве несекторным методом в объеме 1, 10 и 100 мкл число колоний умножают на коэффициенты 10 3 , 10 2 и 10.

Б. Метод секторных посевов.

Метод стандартизирован для исследования объема мочи, равного 0,005 мл.

— Дно чашки Петри делят на 4 равные сектора, обозначаемые буквами А, Б, В и Г;

— Стерильной микробиологической петлей, тарированной на объем 0,005 мл, выполнить посев мочи 30-40 штрихами в секторе А;

— Прожечь петлю и провести 4 штриховых посева из сектора А в сектор Б, а затем аналогичным путем засевают остальные секторы, каждый раз прожигая петлю.

5. Методы предварительной оценки наличия бактерий в моче

5.1 Микроскопические методы исследования мочи

1. Нанести на предметное стекло 10 мкл хорошо перемешанной, но

нецентрифугированной мочи. Обвести место расположения капли маркером и высушить на воздухе.

2. Окрасить препарат по Граму стандартным методом.

3. Микроскопировать препарат при увеличении Ч1000.

Учет результатов: 1 бактериальная клетка соответствует концентрации бактерий в моче, равной 105 клеток/мл .

Слайд-планшетный центрифужный метод

Наиболее надежный метод предварительной оценки степени бактериурии: его чувствительность и специфичность при концентрации бактерий в моче 108КОЕ/мл составляют 98 и 90 %, а при концентрации 106 КОЕ/мл — 63 и 91 %, соответственно.

7. Минимальные идентификационные признаки бактерий, наиболее часто встречающихся в моче.

Для идентификации грамположительных и грамотрицательных бактерий, наиболее часто изолируемых из мочи людей, пользуются приведенными ниже идентификационными критериями. Их следует считать «минимальными», поскольку они являются основными, но не абсолютными: из-за вариабельности свойств для окончательной идентификации изолятов ряда видов бактерий требуются дополнительные тесты (биохимические, иммунологические и др.).

Грамположительные каталазопозитивные кокки, формирующие в мазках грозди.

1.1. S. Saprophyticus культуральные свойства: на CLED формирует желтые колонии, на кровяном агаре — колонии цвета слоновой кости;

— отсутствие коагулазы (тест проводят в пробирках с плазмой крови кролика в случаях, когда получены сомнительные результаты ДНК-азной пробы);

-резистентность к новобиоцину (при использовании дисков с 5 мг антибиотика зона задержки роста не превышает 16 мм).

— культуральные свойства: на CLED и кровяном агаре формирует желтые, крупные колонии (менее вариабельные по размеру, чем у коагалазонегативных стафилококков);

-положительная реакция агглютинации со специфической антисывороткой (дополнительный тест).

1.3. Другие коагулазонегативные стафилококки:

-морфология колоний: на CLED и кровяном агаре белые или желтые;

-несоответствие идентификационным критериям S. saprophyticus и S. aureus.

Грамположительные, каталозонегативные кокки, формирующие в мазках цепочки.

-морфология колоний: на кровяном агаре — серовато-белые без признаков гемолиза, с б- или в-гемолизом, на CLED — желтоватые;

— способность расти в средах с высоким (? 6,5%) содержанием NaCl;

— E. faecium в отличие от E. faecalis ферментирует арабинозу;

— пониженная чувствительность к цефалоспоринам.

— морфология колоний: на кровяном агаре — голубые или серовато-белые колонии, окруженные узкой зоной в-гемолиза, иногда вызывающие б-гемолиз или негемолитические; на CLED — мелкие, бесцветные колонии, иногда становящиеся заметными через 48 ч после посева;

— положительная реакция агглютинации со специфической антисывороткой к

стрептококкам группы В или положительный CAMP-тест;

— чувствительность к цефалоспоринам

2.3. Другие в-гемолитические стрептококки

— морфология колоний: на кровяном агаре — в-гемолиз, на CLED плохо растут;

— положительная реакция агглютинации со специфическими антисыворотками к соответствующим группам стрептококков .

— морфология колоний: на кровяном агаре — б-гемолиз, на CLED не растут или формируют мелкие колонии;

— зона задержки роста оптохином не превышает 14 мм.

Грамположительные, каталазонегативные палочки с типичной морфологией

— морфология колоний: на кровяном агаре — б-гемолиз, на CLED не растут или формируют мелкие колонии, иногда ферментирующие лактозу (пожелтение среды);

— культуральные свойства: на кровяном агаре формируют крупные сухие гемолитические колонии, сходные с колониями энтеробактерий и псевдомонад; морфология бактерий: крупные грамположительные палочки правильной формы, иногда содержат споры;

1. Corynebacterium urealyticum

— культуральные свойства: на кровяном агаре растут медленно, формируя мелкие блестящие колонии;

— резистентны ко многим антимикробным препаратам.

— культуральные свойства: на CLED растут плохо;

— морфология бактерий: часто конические, в мазках образуют скопления в форме буквы V или частокола;

Перечисленные критерии не исключают, что отвечающий им изолят не является листерией.

Грамотрицательные, оксидазонегативные палочки, ферментирующие глюкозу, растущие на среде МакКонки.

A. Энтеробактерии, ферментирующие лактозу (в средах CLED или МакКонки)

— индольный тест на кровяном агаре: положительный результат дает E. coli, отрицательный — другие энтеробактерии;

— наличие в-глюкуронидазы (определяют биохимическими тестами или в хромогенных средах типа Uriselect) подтверждает принадлежность изолята к E. coli;

— для дифференциации неэшерихиозных энтеробактерий проводят тест Фогес-Проскауера: положительный результат дают бактерии родов Klebsiella и Enterobacter, отрицательный — другие энтеробактерии;

Б. Энтеробактерии, не ферментирующие лактозу (в средах CLED или МакКонки)

— при наличие феномена роения на кровяном агаре проводят только индольный тест: положительный результат дает Proteus vulgaris, отрицательный — Proteus mirabilis;

— при отсутствии феномена роения на кровяном агаре проводят тесты Фогес-Проскауера, ONPG и индольный:

— изоляты, давшие отрицательный результат в тесте Фогес-Проскауера и положительный — в индольном тесте и ONPG, идентифицируют как E. coli (дополнительным подтверждением этого служит наличие в-глюкуронидазы);

— изоляты, давшие отрицательный результат в тестах Фогес-Проскауера и ONPG, идентифицируют на основании дополнительных биохимических исследований.

2. Неферментирующие глюкозу грамотрицательные палочки

— культуральные свойства: хороший рост на агаре МакКонки;

— наличие оксидазы, отсутствие способности ферментировать глюкозу.

Идентифицируют до рода/вида только изоляты Pseudomonas aeruginosa, Stenotrophomonas maltophilia и Acinetobater. Остальные изоляты данной группы обозначают как «грамотрицательные палочки, не относящиеся к сем. Enterobacteriaceae».

2.1. Pseudomonas aeruginosa

— культуральные свойства: способна расти при 42°С, колонии и среда окрашиваются в зелено-синий цвет и издают характерный запах (земляники, жасмина), часто проявляет феномен радужного лизиса;

— отсутствие лизин-декарбоксилазы (тест проводят с положительным и отрицательным контролями).

2.2. Stenotrophomonas (Pseudomonas) maltophilia

— особенности роста на питательных средах: колонии формируются в течение 2 дней, при росте на кровяном агаре издают запах аммиака;

— культуральные свойства: формируют выпуклые, круглые, гладкие, слизистые, полупрозрачные или мутные, непигментированные колонии; на кровяном агаре через 48 ч после посева может проявляться гемолиз;

— морфология бактерий: кокковидные палочки.

Изучив литературу и различные методики по бактериологическому исследованию мочи я сделала вывод, что можно определить ,что этот анализ имеет достаточное количество преимуществ такие как высокая специфичность метода и возможность исследовать любую биологическую жидкость и некоторые недостатки.

Пробы мочи имеют высокую диагностическую ценность, но не являются полностью универсальными, поэтому их результаты следует интерпретировать с учетом клинической картины и объективных данных. Однако простота и оперативность проведения анализов мочи позволяет применять их очень широко, в том числе для скрининговых обследований больших групп людей.

Бактериологическое исследование мочи позволяет определить количество бактерий в моче, тем самым, выявив заболевание мочевыводящих путей, так же посев мочи показывает чувствительность выявленных бактерий к антибиотикам.

Так же при изучении и сравнении питательных сред можно сказать, что во все микробиологических лабораториях пользуются тремя основными группами сред:

Эти группы сред наиболее эффективны при исследовании.

При написании курсовой работы для себя можно сделать вывод, что микробиологическая лаборатория является неотъемлемой частью медицины.

1.ГОСТ Р ИСО 15189-2006. Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности.

2. Набер К., Бишоп M., Бперклунд-Иохансеи Т. и соавт. Рекомендации по ведению больных с инфекциями почек, мочевых путей и мужских половых органов. Смоленск. 2008г.

3. МУК 4.2.189004. Определение чувствительности микроорганизмов к антибак- териальным препаратам.

4. Приказ Минздрава СССР от 22.04.1985 от 535 Об унификации микробиологи- ческих (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико- диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений.

5. Методики клинических лабораторных исследовании: Справочное пособие. Том 3. Клиническая микробиология. Бактериологические исследования. Миколо- гические исследования. Паразитологические исследования. Инфекционная иммунодиагностика. Молекулярные исследования в диагностике инфекцион- ных заболеваний / Под ред. В. В. Меньшикова. М.: Лабора. 2009.

6. ГОСТ Р 53079.4-2008. Технологии лабораторные медицинские. Обеспечение качества клинических лабораторных исследовании. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа.7. МУ 4.2.2039-05 Техника сбора и транспортировки биоматериалов в микробио- логические лаборатории.

Строение и функция почек, теория образования мочи. Особенности строения нефрона. Физические свойства мочи и клинико-диагностическое значение. Виды протеинурий, методы качественного и количественного определения белка в моче. Определение глюкозы в моче.

шпаргалка [87,9 K], добавлен 24.06.2010

Обзор лабораторных методов исследования мочи. Общие принципы проведения, правила ведения преаналитического этапа. Памятка пациенту для сбора мочи для анализа. Образцы направлений на исследование мочи. Характеристика различных методов исследования мочи.

курсовая работа [296,2 K], добавлен 08.04.2019

Специальные методы исследования крови и мочи животных. Условия взятия крови и мочи, сохранность до начала лабораторных исследований. Скорость оседания эритроцитов и содержания гемоглобина. Определение времени свертываемости крови по способу Бюркера.

курсовая работа [34,0 K], добавлен 31.03.2011

Мочевыделительная система человека. Образование конечной мочи. Ультрафильтрация или образование первичной мочи, избирательная реабсорбция, секреция. Химический состав клубочкового фильтрата. Нормы суточного диуреза. Патологическая окраска мочи.

презентация [3,7 M], добавлен 20.01.2015

Характеристика правил сбора и транспортирования некоторых биологических материалов в микробиологические лаборатории. Технология взятия основных видов биологического материала: крови, ликвора, желчи, мочи, ректальных мазков, мокрот с дыхательных путей.

реферат [77,9 K], добавлен 05.10.2010

Исследование мочи по общему анализу, по методу Нечипоренко, по методу Зимницкого. Алгоритм подготовки и сбора мочи для исследования. Правила подготовки пациента к лабораторным методам исследования, безопасности при сборе и транспортировке проб.

курсовая работа [39,6 K], добавлен 28.01.2015

Посев мазков из зева и носа на дифтерию. Посев первичного кала (кишечная группа). Постановка короткого пёстрого биохимического ряда. Постановка дисков на антибиотикочувствительность. Забор смывов и воздуха из операционных палат. Посев мочи на микрофлоре.

отчет по практике [31,6 K], добавлен 02.10.2012

Понятие и причины недержания мочи у женщин и мужчин. Лечение больных с недержанием мочи. Специальные физические упражнения при недержании мочи у женщин. Перечень специальных упражнений, укрепляющих мышцы живота и тазового дна (по Васильевой В.Е.).

курсовая работа [674,9 K], добавлен 17.12.2013

Понятие и предпосылки развития острой задержки мочи как патологического состояния, обусловленного скоплением мочи в мочевом пузыре вследствие невозможности самостоятельного мочеиспускания. Этиология и патогенез данного заболевания, его последствия.

презентация [170,7 K], добавлен 12.05.2015

Стрессовое, ургентное недержание мочи. Немедикаментозное лечение заболевания. Тренировка мочевого пузыря. Лечебная физическая культура для женщин с заболеванием недержания мочи. Перечень специальных упражнений, укрепляющих мышцы живота и тазового дна.

курсовая работа [981,0 K], добавлен 13.12.2013

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.

источник