Средняя порция свободно выпущенной мочи

Взятие материала

Мочу для бактериологического исследования берут при естественном мочеиспускании, катетером, из участка подвздошной кишки, использованной для создания искусственного пузыря, надлобковой пункцией мочевого пузыря, билатеральной катетеризацией мочеточника с использованием цистоскопа и другими методами, при которых сведена к минимуму возможность контаминации проб посторонней микрофлорой.

Независимо от способа получения мочи ее следует высевать на питательные среды не позднее чем через 2 ч после сбора. При отсутствии такой возможности пробы хранят не более 24 ч в холодильнике (4 °С) или консервируют борной кислотой. Следует помнить, что моча — прекрасная питательная среда для многих бактерий, поэтому чем позднее после ее сбора проводят посев на питательные среды тем менее достоверным будет результат бактериологического исследования.

Показания к проведению:

подозрение на воспалительные заболевания почек и мочевого пузыря;

диагностика брюшного тифа (с конца 2-й недели заболевания), лептоспироза.

Взятие материала

В стерильную посуду собирают среднюю порцию свободно выпущенной мочи в объеме 3-5 мл. Женщинам рекомендуется сдавать 2-3 порции мочи в течение 3 дней. Перед взятием проб мочи больной должен совершить тщательный туалет наружных половых органов. Это редкая ситуация, когда медработник не может контролировать соблюдение правил сбора материала. Поэтому важно подробно объяснить пациенту правила сбора мочи. Целесообразно напечатать инструкции на обратной стороне бланка направления.

тщательно вымыть половой член теплой водой с мылом и высушить стерильной салфеткой;

обнажить головку полового члена и выпустить небольшую порцию мочи;

прервать мочеиспускание и выпустить порцию мочи в стерильный контейнер;

закрыть контейнер и передать в лабораторию.

вымыть половые органы, используя стерильные марлевые салфетки и теплую мыльную воду, в направлении спереди назад;

промыть половые органы еще раз теплой водой и вытереть стерильной салфеткой; отверстие влагалища желательно закрыть стерильным ватным тампоном;

на протяжении всей процедуры держать половые губы раздвинутыми;

помочиться, выпустив первую порцию мочи; выпустить порцию мочи в стерильный контейнер;

закрыть контейнер и передать в лабораторию.

дать ребенку выпить воды или другой жидкости;

вымыть руки с мылом, сполоснуть водой, высушить;

у мальчиков — тщательно промыть половой член и оттянуть крайнюю плоть, область заднего прохода вымыть теплой водой с мылом и сполоснуть теплой водой, высушить стерильной марлевой салфеткой;

у девочек — тщательно промыть отверстие мочеиспускательного канала, а также промежность и область заднего прохода теплой мыльной водой или жидким мылом, сполоснуть теплой водой высушить стерильной марлевой салфеткой;

усадить ребенка на колени помощника;

у мальчиков — при мочеиспускании держать крайнюю плоть оттянутой для предотвращения контаминации пробы мочи;

у девочек — держать наружные половые губы на расстоянии друг от друга в процессе мочеиспускания;

спустить небольшое количество мочи в специальную посуду для утилизации;

собрать среднюю порцию мочи (10-15 мл) в специальный одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой.

Показания к проведению;

отсутствие возможности получения мочи естественным путем;

большая вариабельность получаемых результатов;

необходимость дифференциации очага инфекции (мочевой пузырь или почки).

Взятие материала

Если мочевой пузырь заполнен, перед катетеризацией пациент должен частично его опорожнить.

Проводят туалет наружных половых органов теплой водой с мылом и высушивают их стерильными марлевыми салфетками, затем вводят катетер в мочевой пузырь.

Собирают из катетера первые 15-30 мл мочи в специальную посуду для утилизации, после чего заполняют на 1/3-1/2 стерильную емкость, в которой мочу доставляют в лабораторию.

Для уточнения локализации инфекции мочевой пузырь опорожняют катетером, промывают раствором антисептика и через 10 мин забирают пробы мочи (при инфекциях мочевого пузыря моча остается стерильной).

Показание к проведению — определение очага инфекции в мочевыводящих путях.

Взятие материала

Перед проведением цистоскопии пациент должен освободить заполненный мочевой пузырь.

Следует обработать наружные половые органы, области промежности и заднего прохода, как указано выше.

Ввести цистоскоп в мочевой пузырь и собрать 5-10 мл мочи в стерильный одноразовый контейнер.

Маркировать стерильный одноразовый контейнер символом КМП (Катетерная Моча Пузыря), затем оросить пузырь стерильным физиологическим раствором.

После орошения пузыря и введения катетера собрать истекающую жидкость, держа концы обоих катетеров над открытым контейнером.

Тщательно промаркировать контейнер символом ПЖП (Промывная Жидкость Пузыря).

Провести мочеточниковые катетеры к среднему отделу каждого мочеточника или почечных лоханок без дополнительного введения жидкости; открыть цистоскоп, чтобы освободить мочевой пузырь.

Не использовать для анализа первые 5-10 мл мочи из каждого катетера в мочеточнике,

Собрать 4 последующих пары проб (5-10 мл каждая) прямо в стерильный одноразовый контейнер или соответствующие стерильные специальные емкости.

Тщательно промаркировать емкости с материалом символами ПП-1, ЛП-1, ПП-2, ЛП-2, где ПП — Правая Почка. ЛП — Левая Почка. Все пробы передать в лабораторию на посев.

Показания к проведению:

жалобы больного на недомогание;

Взятие материала

Отсоединяют мочеприемное устройство и опорожняют его.

Осторожно очищают отверстие тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом, а затем 1-2% раствором йода или другого дезинфектанта, разрешенного к применению для данных целей.

Удаляют избыток йода 70% этиловым спиртом для предотвращения ожога тканей.

Вводят катетер и собирают мочу в стерильную емкость.

Показания к проведению:

получение проб мочи у новорожденных и маленьких детей.

Взятие материала

Этим способом могут быть получены наиболее достоверные результаты. Однако процедура сопряжена с опасностью для здоровья больного, и ее проводят только по клиническим показаниям.

Техника надлобковой пункции:

перед пункцией пациент, если это возможно, должен освободить пузырь, так как имеющаяся в нем жидкость снижает титр микроорганизмов в моче;

дезинфицируют кожу над лобком (лучше после бритья);

через небольшой разрез, сделанный в эпидермисе, шприцем с иглой аспири- руют мочу (10-15 мл) из пузыря1

переносят мочу из шприца в стерильный одноразовый контейнер, отправляемый в лабораторию.

Взятие материала

Непосредственное взятие проб из предстательной железы возможно лишь при хирургической операции, что во многих случаях неприемлемо. Поэтому для диагностики бактериальных простатитов и установления их этиологии, как правило, собирают 1-ю и 2-ю порции мочи, с помощью массажа получают секрет предстательной железы, а затем собирают 3-ю порцию мочи. Перед взятием материала для исследований пациент должен провести тщательный туалет наружных половых органов с помощью теплой воды, мыла и стерильных марлевых салфеток.

Больному предлагают помочиться в стерильный контейнер. Собрав 10-20 мл мочи, он должен продолжить мочеиспускание в емкость для сброса. Контейнер помечают как пробу №1.

Не опорожняя полностью мочевой пузырь, пациент собирает 10-20 мл мочи в другой стерильный контейнер, который помечают как пробу №2.

Врач проводит массаж простаты через задний проход и, если удается получить сок простаты, готовит из него мазок на стекле.

Больной собирает первые 10 мл мочи в третий стерильный контейнер, который помечают как пробу №3.

источник

Не менее 50мл утренней мочи в стерильном мочевом контейнере.

Нельзя собирать мочу во время менструации и в течение 5-7 дней после цистоскопии. Перед сбором мочи провести туалет наружных половых органов. На данный анализ собирается СРЕДНЯЯ утренняя порция мочи (1-ю порцию вылить в унитаз). В лабораторию доставляется в чистой посуде объемом, не менее 50мл.

Моча в стерильном мочевом контейнере.

Перед сбором мочи пациент проводит туалет наружных половых органов. Собирают всю первую утреннюю порцию мочи, перемещивают, отливают в промаркированный контейнер не менее 50 мл мочи, доставляют в лабораторию.

Моча, не менее 50мл в стерильном мочевом контейнере или уриномоновете (суточная или разовая порция). При сборе суточной мочи обязательно указать диурез.

Утром пациент первую порцию мочи выливает в унитаз. Затем в теч. суток мочится в пластик. контейнер, включая порцию мочи утром след. дня. В течение всего времени сбора мочи она должна храниться в холодильнике. После сбора всей мочи ее тщательно перемешивают, в пластик. контейнер вместимостью 100 мл отливают не менее 50 мл мочи, контейнер маркируют с указанием суточного диуреза и доставляют в лабораторию.

Приспособления для взятия:

Восемь емкостей для сбора мочи.

Пациент должен подготовить 8 емкостей для сбора мочи. Подписать: 1. с 9-12 ч, 2. 12-15 ч, 3. 15-18 ч, 4.18-21 ч, 5. 21-24ч, 6. 0-3 ч, 7.3-6 ч, 8. 6- 9 ч. Утром до 9 часов пациент опорожняет мочевой пузырь. Затем в течение суток моча собирается отдельными трехчасовыми порциями в подписанные емкости. Если объема контейнера недостаточно, то использовать дополнительный с указанием трехчасового интервала. Контейнеры должны иметь четкую маркировку по времени. Моча, собранная за сутки, доставляется в лабораторию вся сразу.

Стерильный мочевой контейнер

Утром пациент первую порцию мочи выливает в унитаз. Затем в течение суток мочится в пластиковый контейнер, включая порцию мочи утром следующего дня. В течение всего времени сбора мочи она должна храниться в холодильнике. После сбора всей мочи ее тщательно перемешивают, в пластиковый контейнер, вместимостью 100 мл отливают не менее 50 мл мочи, контейнер маркируют с указанием суточного диуреза и доставляют в лабораторию.

Приспособления для взятия:

У регистратора необходимо взять специальный контейнер.

Исследованию подлежит средняя порция свободно выпущенной мочи, взятой в количестве 3-5 мл в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов. Материал для исследования следует брать до начала антибактериальной терапии или в интервалах между курсами лечения. Доставка в лабораторию в течение 2 часов.

Приспособления для взятия:

Суточный анализ мочи собирается в стерильный контейнер, кровь сдается в лаборатории. В день доставки мочи в лабораторию выполняется забор крови.

Правила сбора суточной мочи (за 24 часа):

1. Пациент должен отметить начало сбора мочи, например, 6 часов утра.
2. Вся моча до этого времени выливается в унитаз.
3. С 6 часов утра до 6 часов утра следующего дня пациент собирает мочу в контейнер объемом не менее 2-х литров.
4. Собранная моча за сутки перемешивается, измеряется суточный диурез (кол-во мочи, выделенной за сутки), отливается и не менее 50 мл доставляется в лабораторию.

Обязательно указать рост, вес пациента, суточный диурез.

Приспособления для взятия:

Стерильный пластиковый контейнер

Особенности взятия:

Биоматериал сдаётся после не менее 48-часового и не более семидневного полового воздержания. В этот период нельзя принимать алкоголь, лекарственные препараты, посещать баню или сауну, подвергаться воздействию УВЧ. При повторном исследовании желательно устанавливать, по возможности, одинаковые периоды воздержания для снижения колебаний полученного результата. Эякулят собирается в контейнер путем мастурбации в клинике.

Подготовка к исследованию:

За 1 — 2 дня до обследования рекомендуется исключить из рациона продукты, усиливающие газообразование в кишечнике: сырые овощи, богатые растительной клетчаткой, цельное молоко и молочные продукты, чёрный хлеб, бобовые, газированные напитки, фруктовые соки, а также высококалорийные кондитерские изделия — пирожные, торты. УЗИ органов брюшной полости необходимо проводить утром, натощак (не пить, не есть). Если исследование назначено после 13:00 — допускается лёгкий завтрак, но не менее чем за 8 часов до исследования с исключением вышеперечисленных продуктов, а также жиров и яиц. Не рекомендуется также курить до исследования. Если вы принимаете лекарственные средства, предупредите об этом врача УЗИ. Нельзя проводить исследование после гастро- и колоноскопии.

Подготовка к исследованию:

Накануне и в день исследования из пищи исключить молоко, черный хлеб, фрукты и овощи в свежем виде, фруктовые соки. Данное исследование проводится при полном мочевом пузыре, поэтому необходимо не мочиться до исследования в течение 3 — 4 часов и выпить 1,2 литра негазированной жидкости за 1,5 часа до процедуры.

Подготовка к исследованию:

Накануне и в день исследования из пищи исключить молоко, черный хлеб, фрукты и овощи в свежем виде, фруктовые соки. Данное исследование проводится при полном мочевом пузыре, поэтому необходимо не мочиться до исследования в течение 3 — 4 часов и выпить 1,2 литра негазированной жидкости за 1,5 часа до процедуры. Накануне исследования необходима очистительная клизма.

Подготовка к исследованию:

Исследование молочных желез необходимо проводить в первые 10 дней менструального цикла.

Подготовка к исследованию:

Специальной подготовки не требуется. Продолжительность исследования 1 час.

• Надпочечников.
• Лимфатических тканей.
• Мягких тканей.
• Органов мошонки.
• Полового члена.
• Органов малого таза.
• Щитовидной железы.
• Почек и мочеточников.
• Мочевого пузыря с определением остаточной мочи.

Подготовка к исследованию:

Специальной подготовки не требуется.

Подготовка к исследованию:

За 3 часа до проведения исследования необходимо исключить прием пищи, кофе и алкоголя, не курить. Не следует проводить исследование после стрессовых ситуаций и больших физических нагрузок, заранее необходимо проконсультироваться с врачом о принимаемых лекарственных препаратах, о показаниях и противопоказаниях. Мужчинам следует побрить грудную клетку для постановки электродов. Необходимы спортивная одежда и обувь.

Подготовка к исследованию:

Принять душ, так как в течение суток нельзя принимать водные процедуры. Подготовить грудную клетку к прикреплению электродов (побрить область грудины). Одежда: тонкая, удобная (желательно с рукавами), свободная. Иметь при себе результаты предыдущих исследований.

Подготовка к исследованию:

Исследование проводится строго натощак, в том числе не курить. Не принимать лекарственные препараты в день исследования. Если пациент принимал бронходилататеры, то обязательно за час до исследования проинформировать врача.

источник

Сайт предоставляет справочную информацию исключительно для ознакомления. Диагностику и лечение заболеваний нужно проходить под наблюдением специалиста. У всех препаратов имеются противопоказания. Консультация специалиста обязательна!

Проба Нечипоренко используется для уточнения количества лейкоцитов, эритроцитов и цилиндров в моче. Данную пробу применяют в случае выявления большого количества данных элементов крови в общем анализе мочи. Если результат пробы Нечипоренко в пределах нормы, то «плохой» результат общего анализа мочи (например, увеличение количества эритроцитов, лейкоцитов или цилиндров) является недостоверным, то есть заболевание отсутствует. Контроль эффективности проводимой терапии также проводят с помощью пробы Нечипоренко. При этом, в случае излечивания и прекращения воспалительного процесса, происходит нормализация показателей пробы Нечипоренко.

Правила сбора мочи по Нечипоренко
Мочу для пробы Нечипоренко собирают следующим образом: утром необходимо обмыть промежность и наружные половые органы теплой водой без применения дезинфицирующих растворов. После чего удобно расположитесь над ванной или тазом, и выпустите первую порцию утренней мочи. Задержите мочеиспускание, и поднесите к уретре стерильную емкость, в которую соберите небольшое количество мочи (достаточно 25-30 мл). Оставшуюся мочу выпустите в ванну или таз. Таким образом, проба Нечипоренко собирается, как и моча для общего анализа – средняя утренняя порция.

Если необходимо получить мочу из мочевого пузыря без прохождения по уретре, то прибегают к взятию пробы с помощью катетера. Собранную мочу необходимо в максимально сжатые сроки доставить в лабораторию, так как анализ необходимо провести в течение 2 часов.

Нормы пробы Нечипоренко
Далее подсчитывают число эритроцитов, лейкоцитов и цилиндров в камере Горяева, и результат выражают в единицах на 1 мл мочи. В норме у здорового человека количество лейкоцитов не превышает 2000 в 1 мл, эритроцитов – 1000 в 1 мл, и цилиндров – 20 в 1 мл.

Расшифровка результатов пробы Нечипоренко
Увеличение числа лейкоцитов, эритроцитов и цилиндров в пробе Нечипоренко, как правило, говорит о патологии почек. Причины высокого содержания показателей пробы Нечипоренко представлены в таблице.

Если анализ сдает женщина, и разделяет мочу на две порции (двухстаканная проба), то результат расшифровывается следующим образом. Большее количество лейкоцитов или эритроцитов в первой порции, по сравнению со второй, свидетельствует о заболевании уретры или мочевого пузыря; во второй – о патологии мочевого пузыря или почек. Равное количество лейкоцитов или эритроцитов в обеих порциях свидетельствует о патологии почек.

Проба Зимницкого проводится для оценки концентрационной способности почек. Проба Зимницкого позволяет выявить почечную недостаточность и наблюдать за динамикой заболевания, отслеживая риск осложнений или ухудшения функционального состояния органа.

При проведении анализа пробы Зимницкого определяют количество мочи (дневное, ночное и суточное), а также измеряют относительную плотность каждой порции.
Правила сбора мочи по Зимницкому
Сбор мочи для пробы Зимницкого проводится в течение суток на фоне обычного питьевого и пищевого режимов, однако прием мочегонных препаратов следует отменить на этот промежуток. Чтобы собрать мочу по Зимницкому, подготовьте 8 чистых баночек, и подпишите каждую номером (1, 2, 3 и т.д.) или временем мочеиспускания (9.00, 12.00 и т.д.). В день начала сбора пробы встаньте в 6.00 утра и помочитесь в туалет. Затем через три часа (в 9.00) помочитесь в баночку с номером 1. Мочитесь в очередную баночку каждые три часа, включая ночное время. Последняя проба собирается в 6.00 следующего утра.Таким образом, вы соберете 8 баночек мочи в 9.00, 12.00, 15.00, 18.00, 21.00, 24.00, 03.00, 06.00. Все 8 баночек сдайте в лабораторию. Мочу не сливать в одну большую емкость! На протяжении суток сбора пробы Зимницкого фиксируйте количество потребленной жидкости.

Нормы пробы Зимницкого
Порции мочи в 9.00, 12.00, 15.00 и 18.00 относятся к дневным, а в 21.00, 24.00, 03.00 и 06.00 – к ночным. Нормальное количество дневных порций мочи составляет 200-350 мл, а ночных – 40-220 мл.Нормальная относительная плотность дневных порций составляет 1010-1025, а ночных – 1018-1025. Разница между максимальным и минимальным значением плотности в пробах не должна превышать 0,012 – 0,016 единиц. В норме суточный объем мочи составляет 70-75% от количества выпитой жидкости. Дневной диурез превышает ночной, и составляет не менее 2/3 от суточного.

Расшифровка результатов пробы Зимницкого
Равные объемы ночного и дневного объемов мочи свидетельствуют о нарушении концентрационной способности почек, то есть о почечной недостаточности. Одинаковый объем мочи во всех порциях свидетельствует о нарушении приспособительных способностей почек к изменяющимся условиям окружающей среды в течение суток.

Уменьшение относительной плотности мочи во всех порциях, включая ночные, абсолютные значения которых не превышают 1020, свидетельствует о нарушении концентрационной способности почек, то есть о почечной недостаточности. Выделение такой мочи с низкой плотностью называется гипостенурия. Низкая плотность мочи также наблюдается при других патологиях:

• отечность;
• рацион с низким содержанием белка и соли;
• диабет.

Практически одинаковая относительная плотность всех порций мочи обнаруживается при почечной недостаточности.

Увеличение относительной плотности мочи обусловлено нарушением кровоснабжения почек при сердечной недостаточности, остром гломерулонефрите и нефротическом синдроме. Высокая концентрация белка или глюкозы в моче также повышает относительную плотность, которая в данном случае не связана с заболеванием почек. Особняком стоит повышение относительной плотности мочи у беременных женщин вследствие токсикоза.

Примеры нормальной пробы Зимницкого и пробы больного почечной недостаточностью
Пример нормальной пробы Зимницкого.

Суточный объем мочи –1480 мл, дневной – 980 мл, ночной – 500 мл.

Пример пробы Зимницкого при почечной недостаточности.

Суточный объем мочи – 1060 мл, дневной – 450 мл, ночной – 610 мл.

Проба Сулковича представляет собой экспресс-тест, позволяющий выявить уровень кальция в моче. Данный метод используется для коррекциии подбора дозировок витамина D. Пробу Сулковича чаще всего выполняют детям, которые получают витамин D, чтобы отследить уровень выделения кальция и не допустить передозировки.

Проба Сулковича проводится следующим образом: моча смешивается с реактивом Сулковича, в результате чего может образоваться помутнение различной степени выраженности. Фиксация результатов и оценка степени помутнения основана на полуколичественном методе. Варианты результата пробы Сулковича отражены в таблице.

Выявление большого количества КОЭ одного и того же микроорганизма свидетельствует об остром течении инфекционно-воспалительного процесса. Если же большое количество КОЭ образовано разными микробами, то инфекционное заболевание является хроническим.

В случае выявления хронического инфекционного воспаления применяют бактериологическое исследование мочи с целью выяснения конкретного вида микроорганизма, вызвавшего патологический процесс. В данном случае моча высевается на специальные среды, возбудителю создают условия для роста, после чего идентифицируют. Длительность диагностики полностью окупается последующей прицельной точностью антибактериальной терапии, которая позволит полностью излечить хроническое инфекционное заболевание.

Сегодня существует множество методов исследования, однако не стоит пренебрегать надежными и хорошо себя зарекомендовавшими пробами, позволяющими сократить время и затраты на обследование. Пробы мочи имеют высокую диагностическую ценность, но не являются полностью универсальными, поэтому их результаты следует интерпретировать с учетом клинической картины и объективных данных. Однако простота и оперативность проведения анализов мочи позволяет применять их очень широко, в том числе для скрининговых обследований больших групп людей.

Автор: Наседкина А.К. Специалист по проведению исследований медико-биологических проблем.

источник

Показания для бактериологического посева. Преимущества и недостатки бактериологического исследования мочи, условия выполнения технологии и материальные ресурсы. Минимальные идентификационные признаки бактерий, наиболее часто встречающихся в моче.

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

на тему: Бактериологические посевы мочи

1. Преимущества и недостатки бактериологического исследования мочи

2. Показания для бактериологического посева

3. Требования к обеспечению выполнения технологии

3.1 Требования к специалистам и вспомогательному персоналу

3.2 Условия выполнения технологии бактериологического анализа мочи и функциональное значение

3.3 Материальные ресурсы, необходимые для выполнения технологии: приборы, средства измерения, лабораторное оборудование

3.3.2 Реагенты и средства дезинфекции

3.3.3 Лабораторная посуда и расходные материалы

4. Технологический поток бактериологического исследования мочи

4.1.2 Методы взятия образцов мочи

4.1.3 Хранение и транспортировка проб мочи

4.1.4 Идентификация образца

4.1.5 Оценка пригодности образца для исследования

4.2 Аналитический (лабораторный) метод

5. Методы предварительной оценки наличия бактерий в моче

5.1 Микроскопическое исследование мочи

6. Минимальные идентификационные признаки бактерий, наиболее часто встречающихся в моче

Бактериологические посевы мочи заключаются в том, чтобы идентифицировать микроорганизмы (обычные бактерии), которые вызывают инфекцию мочевых путей. Инфекции мочевых путей чаще вызываются у женщин и у девочек. Если посев мочи положителен, то для этого проводят тест определения чувствительности к антибиотикам. Чтобы определить какой антибиотик лучше подходит для лечения.

При выделении определенных микроорганизмов проводится еще один немаловажных анализов — антибиотикограмма — определение чувствительности обнаруженных патогенов к антибактериальным препаратам и бактериофагам.

Целью моей курсовой работы является:

— Изучить литературу и методики по бактериологическому исследованию мочи.

Задачи поставленные при написании курсовой работы:

— Выявить микроорганизмы при бактериологическом исследовании мочи;

— Сравнить какими средами пользуются для определения в бактериологическом исследовании мочи;

— Раскрыть методики взятия образцов для бактериологического исследования мочи.

бактериологический посев моча

1. Преимущества и недостатки бактериологического исследования мочи

Преимуществами бактериологического посева мочи являются:

— Высокая специфичность метода (то есть перекрестных ложных реакций не наблюдается).

— Возможность исследовать исследовать любую биологическую жидкость человека.

— Лечебная цель — определение чувствительности выявленного микроба к тому или иному лечебному средству (антибиотикограмма) , что позволяет с достаточно высокой точностью проводить лечебные назначения.

— Позволяет не только определить возбудителя, но и выяснить его количество в полученном материале.

Недостатки бактериологического посева мочи:

— Результат анализа приходится ждать в среднем 5 дней, а в отношении некоторых возбудителей до нескольких недель (микобактерия туберкулеза).

— Высокие требования к забору материала.

— Определенные требования к квалификации персонала бактериологической лаборатории.

— Иногда может давать ложный результат.

2. Показания для проведения бактериологического исследования мочи

Применение микробиологического исследования достаточно широко распространено в медицинской практике, в частности, в инфекционных болезнях, гинекологии, урологии, хирургии, отоларингологии, онкологии и других. Безусловным показанием для необходимости проведения бакпосева являются воспалительное заболевание органов и систем органов и систем человека, подозрение на септический процесс.

Основными показаниями проведения бактериологического исследования мочи служит наличие заболевания у пациента мочеполовой системы. В случае неосложненных ИМП при отсутствии структурных и функциональных нарушений мочеполовой системы, а так же сопутствующих заболеваний, которые могут повышать риск их развития, или неэффективности лечения, стартовая терапия может быть назначена эмпирически без проведения бактериологического исследования мочи. Выбор препарата в этом случае проводится на основании имеющихся данных локального эпидемиологического мониторинга чувствительности к антимикробным препаратам основных возбудителей ИМП.

Бактериологическое исследование мочи следует проводить в следующих случаях:

— Подозрение на пиелонефрит;

— Подозрение на ИМП, связанную с проведением медицинских манипуляций (цистоскопия, катетеризация), а так же с оказанием медицинской помощи (в т.ч. нозокомиальные ИМП);

— Наличие симптоматики ИМП у мужчин;

— Наличие симптоматики ИМП у беременных женщин;

— Осложненные и/ или рецидивирующие ИМП у женщин старше 65 лет;

— Клинические признаки ИМП у лиц с иммунодефицитами, почечной недостаточностью, сахарным диабетом, аномалия развития мочеполовой системы, мочекаменной болезнью, после трансплантации почки;

— Повышение температуры тела у пациентов с постоянным катетером;

— Наличие у детей клинических проявлений ИМП или лихорадка при отсутствии видимых причин в течении симптомов ИМП;

— Неэффективность предшествующей антибиотикотерапии ИМП;

Скрининговое бактериологическое исследование мочи рекомендуется проводить двум группам пациентов повышенного риска развития осложненных ИМП:

— беременным женщинам (при первом или последующих посещении женской консультации, а в случае проведения лечения ИМП — 1-4 недели после его завершения);

— пациентам, которым планируется проведение хирургических операций на органах мочевой системы.

3. Требования к обеспечению выполнения технологии

3.1 Требования к специалистам и вспомогательному персоналу

В выполнении данной технологии принимают участие:

— врач-бактериолог, в обязанности которого входит контроль всего технологического процесса и непосредственное выполнение этапов бактериологического анализа мочи, требующих высокой квалификации и специальной подготовки (учет результатов посева проб мочи на питательные среды и проведение при необходимости дополнительных исследований направленных на идентификацию выделенных микроорганизмов).

— специалист со средним медицинским образованием ( медицинский технолог, лабораторный техник, фельдшер-лаборант, лаборант). В его обязанности входит прием поступающих в лабораторию проб мочи и сопроводительных документов, проведение технических манипуляций, не требующих высокой квалификации: подготовка стерильных комнат, ламинарных боксов, расходных материалов, включая приготовление реагентов и питательных сред (при наличии такой необходимости), посев проб мочи на питательные среды, культивирование посевов в термостате, количественный учет выросших в посевах колоний бактерий, утилизацию использованных расходных материалов и остатков исследованных проб.

3.2 Условия выполнения технологии бактериологического анализа мочи и функциональное значение

Комплекс исследований «Бактериологический анализ мочи» выполняется в бактериологических лабораториях амбулаторно-поликлинических и стандартных учреждений здравоохранения (любой формы собственности), имеющих лицензию на осуществление медицинской деятельности по разделу «Бактериология».

Функциональное назначение услуги: диагностика и мониторинг течения ИМП, определение чувствительности возбудителей ИМП в антимикробным препаратам, профилактические обследование групп повышенного риска возникновения бактериальных ИМП.

3.3 Материальные ресурсы, необходимые для выполнения технологии: приборы, средства измерения, лабораторное оборудование

Для выполнения микробиологического исследования мочи пользуются стандартными для микробиологической лаборатории оборудованием, реагентами и материалами, имеющие надлежащий сертификат качества и действующий срок годности.

Стандартные питательные среды для культивирования микроорганизмов:

— универсальные (например, кровяной агар, CLED);

— селективные (Эндо, Маккони, колумбийский CNA агар, и др.);

— дифференциально-диагностические (хромогенные и др.);

Питательные среды приобретают в готовом для применения виде или в форме сухих смесей, предназначенных для самостоятельного приготовления. Среды готовят в строгом соответствии инструкциям изготовителя.

3.3.2 Реагенты и средства дезинфекции

В зависимости от используемых методов выполнения данной технологии следует применять соответствующие реагенты с не истекшим сроком годности.

Для дезинфекции и утилизации остатков проб и контаминированных пробами объектов следует использовать зарегистрированные в России и рекомендованные к применению в медицинских учреждениях и лабораториях дезинфицирующие средства в концентрации и времени экспозиции, указанных в рекомендациях по использованию.

3.3.3 Лабораторная посуда и расходные материалы

При проведении бактериологического анализа мочи к перечисленным ниже расходным материалам предъявляют такие же требования, как и при бактериологическом исследований других биологических материалов.

Одноразовые стерильные контейнеры для сбора и транспортировки мочи с устойчивым основанием, изготовленные из прозрачного материала, (желательно из пластика, что предотвращает поломку, облегчает дезинфекцию и утилизацию контейнера), инертного к компонентам мочи. Крышка должна герметично закрывать контейнеры и легко открываться; она может быть сплошной или содержать специальные закрывающие прорези для вакуумных пробирок и специальных приспособлений типа «дипстрик».

Секла предметные и покровные стандартных размеров для микропрепаратов.

Чашки бактериологические (Петри) для выращивания культур микроорганизмов на питательных средах.

Штативы и переноски для пробирок, контейнеров, чашек Петри.

Кюветы и штативы-рельсы для фиксации и окрашивания мазков.

Петли бактериологические калиброванные на 1, 5 и 10 мкл.

Дозаторы переменного объема полуавтоматические и стерильные наконечники на них.

Пипетки градуированные и пастеровские.

Шпатели Дригальского стерильные.

Посуда мерная лабораторная.

Диски (таблетки) с антибиотиками, Е-тесты, планшеты и стрипы с лиофилизированным бульоном и серийными разведениями антимикробных препаратов для определения чувствительности к ним выделенных из мочи культур уропатогенов.

Микроскоп бинокулярный (с набором объективов и окуляров) и осветитель для обнаружений бактерий в моче и изучения морфологии культур бактерий.

Цинтрифуга лабораторная для осаждения бактерий.

Термостаты электрические для выращивания посевов на питательных средах, поддерживающие температуру в пределах + 35 о С

Весы лабораторные общего назначения.

Холодильник поддерживающий температуру -4-6 о С для хранения проб мочи, культур и реагентов.

Спиртовки и газовые горелки.

Счетчики колоний автоматические и полуавтоматические для подсчета колоний.

Анализаторы для бактериологического анализа мочи, идентификации микроорганизмов и определения их чувствительности к антимикробным препаратам.

4. Технологический поток бактериологического исследования мочи

Технологический поток бактериологического исследования анализа мочи состоит из преаналитического и аналитического (лабораторного) этапов.

При проведении преаналитического этапа необходимо учитывать требования ГОСТ Р 53079.4- 2008 и МУ 4.2.2039-05

Необходимость определения точного количества микроорганизмов в 1 мл исследуемой мочи для диагностики ИМП определяет особые требования к сбору и технике посева образцов мочи.

В условиях стационара средний медицинский персонал отделения отвечает за подготовку пациента, правильный сбор самим пациентом, соблюдения режима хранения и доставки проб в лабораторию. Специалистами лаборатории должна быть составлена для медицинского персонала клинических отделений письменная инструкция по правилам взятия, регистрации, хранении и первичной подготовки мочи для бактериологического анализа. При необходимости сбора мочи через катетер, дренаж или пункцией мочевого пузыря эти процедуры выполняет врач или обученный средний медицинский персонал с использованием специального оборудования и инструментов.

В амбулаторных условиях пациент собирает мочу дома без наблюдения медицинского персонала. В связи с этим его необходимо обеспечить письменными инструкциями (памятками), подготовленными специалистами лаборатории, для обеспечения унифицированных условий сбора материала. Так же, как и в стационаре, при сборе мочи в амбулаторных условиях пациентам рекомендуется предоставлять специальные стерильные контейнеры для сбора образца и приспособление для полуавтоматического посева мочи типа «дипстрик». Использование этих устройств позволяет проводить посев мочи не только в лабораторных условиях, но и непосредственно на месте сбора проб (у постели больного, поликлиниках и лечебных учреждениях). С их помощью можно к минимуму свести преаналитический период, что исключает получение завышенных результатов оценки тяжести бактериурии, обусловленных размножением бактерий в пробах мочи в процессе их хранения и транспортировке в лабораторию.

По возможности, взятие проб материала для исследований следует выполнять до начала антимикробной терапии или в интервалах между курсами лечения. Для контроля эффективности лечения ИМП процедуру проводят после его окончания. Наиболее достоверные результаты могут быть получены при исследовании средней порции мочи (3…20 мл), собранной после ночного отдыха до завтрака.

Случайный образец собирают в любое неустановленное время. Такая необходимость обычно возникает при бактериологическом анализе мочи грудных детей, т.к. у этой категории пациентов невозможно собрать образец за длительный или строго определенный промежуток времени, а также в экстренных случаях. Не следует форсировать диурез посредством приема пациентом жидкости, т.к. при этом происходит разбавление мочи, ведущее к снижению титра бактерий.

Катетеризацию мочевого пузыря для рутинного исследования не применяют из-за риска инфицирования и возможности травмирования слизистой оболочки мочевых путей. В некоторых случаях к ней прибегают для уточнения того, где локализуется инфекция — в мочевом пузыре или почках. В особых случаях (новорожденные и грудные дети, пациенты с заболеваниями предстательной железы или отсутствием контроля мочеиспускания, а также при необходимости определения локализации инфекции) проводят пункцию мочевого пузыря.

Риск колонизации мочевого пузыря микроорганизмами при правильно выполненной надлобковой пункции ниже, чем при катетеризации мочевого пузыря.

Однако, инвазивный характер процедуры не позволяет использовать ее в качестве рутинной. Для сбора мочи у грудных и маленьких детей используют специальные мешки с гипоаллергенным адгезивным средством, обеспечивающим плотное прилегание приспособления к коже. Их проверяют каждые 15 мин, собранный образец переливают в контейнер для сбора мочи, который маркируют и транспортируют в бактериологическую лабораторию. В каждом конкретном случае способ взятия мочи определяет врач-клиницист.

4.1.2 Методы взятия проб мочи

1. Средняя порция свободно-выпущенной мочи:

— руки вымыть с мылом и насухо вытереть;

— провести тщательный туалет наружных половых органов теплой водой без применения

антисептиков и просушить их салфеткой;

— открыть стерильный контейнер, не дотрагиваясь до внутренних его поверхностей;

— при мочеиспускании собрать в контейнер среднюю порцию мочи (первая порция не собирается, т.к. всегда контаминирована микрофлорой уретры; мочеиспускание завершается в туалет);

— плотно закрыть крышку контейнера со взятым образцом.

Примечание. Не следует собирать мочу для бактериологического анализа у женщин в период менструации. Нельзя использовать для бактериологического анализа мочу из мочеприемника и подкладного судна.

2. Катетеризация мочевого пузыря:

— выполняется врачом или обученным медицинским персоналом;

— с учетом правил асептики/антисептики и правильного положения пациента после обработки наружного отверстия уретры установить стерильный катетер в мочевой пузырь, при необходимости предварительно смочив его стерильным вазелиновым маслом;

— выпустить первые 15-30 мл мочи;

— собрать для исследования следующую порцию, при необходимости надавливая левой рукой на переднюю брюшную стенку над лобком; — после прекращения выделения мочи осторожно извлечь катетер.

3. Моча, полученная из эпицистосомы, дренажа или установленного постоянного мочевого катетера.

Отбор пробы проводит врач или обученный медицинский персонал после замены дренажа/катетера или путем стерильной пункции. В этом случае с соблюдением правил асептики/антисептики после обработки спиртом наружного порта катетера необходимо собрать достаточное количество мочи с помощью стерильного шприца.

Примечание. Нельзя использовать для бактериологического анализа мочу из мочеприемника, соединенного с дренажем/катетером.

— выполняется врачом или обученным медицинским персоналом;

— перед процедурой аспирации мочевой пузырь должен быть наполнен и пальпироваться над лоном;

— при необходимости следует выбрить переднюю брюшную стенку в предполагаемом месте пункции;

— провести пункцию стерильным шприцом с иглой путем аспирации мочи из мочевого пузыря и перенести мочу в стерильный контейнер.

5. Моча, полученная при цистоскопии

Сбор проб мочи проводит врач-уролог в специально оборудованных цистоскопических комнатах лечебно-профилактических учреждений с помощью инструментов, необходимых для проведения цистоскопии.

4.1.3 Хранение и транспортировка проб мочи

Образец мочи необходимо доставить в лабораторию в течение 2 ч после взятия. При невозможности доставки проб мочи в лабораторию в указанный срок разрешается хранить их при +4°С в течение 24 ч с момента взятия. Образцы нельзя замораживать! В случае если хранение в охлажденном виде и доставка проб в лабораторию в течение суток невозможны, допускается их сбор и хранение в контейнерах или вакуумных пробирках с борной кислотой, стабилизирующей концентрацию бактерий.

Пробы с указанным консервантом можно хранить при комнатной температуре в течение срока, не превышающего 24 ч. Для избежания чрезмерной ингибиции уропатогенов следует применять борную кислоту в концентрации, не превышающей указанную, или применять коммерческие транспортные системы с этим консервантом. Кроме того, следует учитывать, что борная кислота снижает жизнеспособность и высеваемость псевдомонад.

Возможен экспресс-посев мочи в специальные приспособления типа «дипстрик» непосредственно в месте сдачи проб мочи пациентами. Устройства отправляют в лабораторию сразу после засева или в течение последующих 24 ч (их хранят не в холодильнике, а при комнатной температуре!).

При наличие термостата в месте сбора проб мочи рекомендуется также инкубировать в них засеянные устройства в течение 18-24 ч и отправлять в лабораторию только те из них, в которых по истечению указанного срока появились признаки роста микроорганизмов.

4.1.4 Идентификация образца

Маркировка. Контейнеры и тест-системы с пробами мочи маркируют любым способом (несмываемым маркером, этикетками и пр.), обеспечивающим точную идентификацию проб.

Заявка (направление) на исследование. Каждый образец мочи должен поступать в лабораторию в сопровождении направления (заявки) на исследование, составляемого врачом-клиницистом.

В направлении указывают ФИО пациента, пол, возраст или год рождения, способ получения пробы мочи (например, взятие мочи катетером), время ее сбора, характеристику образца (утренний или случайный), наличие в пробах консерванта (если его использовали, то указывают название реагента и его концентрацию), предварительный клинический диагноз, использованные для лечения пациента антимикробные препараты, фамилию и инициалы назначившего исследование лечащего врача.

Сопроводительный документ. К каждой партии образцов мочи и засеянных ими устройств прилагают сопроводительный документ, в котором перечисляют количество направляемых в лабораторию материалов, их маркировку и соответствие заявкам на исследование.

4.1.5 Оценка пригодности образца для исследования

После доставки образцов мочи в лабораторию ее сотрудник, принимающий материал, должен проверить правильность оформления направления на исследование, маркировку (код или ФИО пациента должны быть идентичны данным, указанным в бланке-направлении), целостность контейнеров и зарегистрировать поступивший материал.

Непригодными для бактериологического исследования являются образцы:

— немаркированные или несущие неверную маркировку;

— для которых не указаны дата, время и место сбора мочи;

— собранные ранее 24 ч до момента доставки в лабораторию;

— при нарушении целостности и/или герметичности контейнеров (в т.ч. пролитые пробы);

— имеющие посторонние включения.

В случае непригодности доставленного образца необходимо в кратчайшие сроки уведомить врача, назначившего исследование, и рекомендовать повторное взятие материала с соблюдением всех перечисленных выше правил. До получения уточнений образцы можно хранить в холодильнике (4…6°С) до 24 ч с момента их взятия.

В случаях, когда повторное взятие образцов мочи у пациента невозможно, то при оформлении результатов бактериологического анализа необходимо отразить возможность влияния нарушения регламента преаналитического этапа на полученный результат.

4.2 Аналитический (лабораторный) этап

Методы предварительной оценки наличия бактерий в моче пациента используют для быстрого получения информации о наличии, количестве и типе микроорганизмов в моче. К ним относятся: микроскопические методы и методы обнаружения продуктов метаболизма бактерий.

Выполняются по запросу лечащего врача в экстренных ситуациях как первый этап специфической диагностики, а также в качестве скрининга отдельных категорий пациентов и определения показаний для дальнейшего обследования. При рутинном бактериологическом анализе мочи они не обязательны.

Экспресс-методы не требуют участия высококвалифицированного персонала и применения специализированного оборудования, поэтому ими можно пользоваться не только в микробиологических лабораториях, но также в лечебных учреждениях и клинико-диагностических лабораториях. Методы бактериологического (культурального) исследования мочи.

Целью бактериологического анализа мочи является: выделение и идентификация возбудителя ИМП и определение его концентрации в образце мочи (степени бактериурии).

Если сопоставление полученных результатов с данными анамнеза и клинического обследования пациента позволяет констатировать этиологическую значимость выделенного микроорганизма в заболевании, далее определяют его чувствительность к антимикробным препаратам. Для выделения бактерий из мочи применяют универсальные, селективные и дифференциально-диагностические среды.

Универсальные питательные среды (кровяной агар, среда CLED) поддерживают рост как грамположительных, так и грамотрицательных бактерий.

Кровяной агар пригоден для культивирования как неприхотливых, так и прихотливых бактерий, но при высокой концентрации многие быстро растущие микроорганизмы дают на нем газонный рост, ингибируют формирование колоний других микроорганизмов и маскируя их.

На среде CLED ингибируется феномен роения протеев и одновременно по изменению цвета среды можно судить о способности изолятов ферментировать лактозу.

Колумбийский CNA агар предназначен для селективной изоляции грамположительных микроорганизмов. Из числа селективных сред для грамотрицательных бактерий чаще всего применяют среды МакКонки и Эндо, позволяющие проводить первичную дифференциацию выросших культур по способности ферментировать лактозу).

Хромогенные среды облегчают и ускоряют идентификацию изолятов бактерий на основании выявления у них специфической ферментативной активности,обеспечивающей их специфическое окрашивание.

1. Титр бактерий в моче определяют в автоматическом режиме (на специальных анализаторах в соответствии с инструкциями по их эксплуатации) и описанными ниже ручными методами на неселективных средах (питательном и/или кровяном агарах).

Посевы инкубируют в условиях обычной атмосферы при 35-37 °С в течение 18-24 ч, после чего проводят учет результатов. В ряде случаев срок инкубации продлевают до 48 ч:

— образец мочи получен посредством надлобковой пункции;

— после суточной инкубации рост микроорганизмов проявляется настолько слабо, что невозможно оценить морфологию культур и выделить их в чистом виде;

— результат не соответствует информации, полученной при микроскопии мазков, клиническим данным и пр.;

— исследуемый образец получен от пациентов с тяжелыми нарушениями иммунной системы (например, у реципиентов трансплантированных органов);

— если необходимо исключить наличие в образце грибов.

— В чашку Петри с питательной средой вносят строго определенный объем исследуемого образца (таблица 1): пробы, полученные пункцией мочевого пузыря в объеме 10 или 100 мкл, взятые другими способами — в объеме 1 или 10 мкл. Процедуру осуществляют тарированной на определенный объем стерильной бактериологической петлей или полуавтоматическим микродозатором со сменными стерильными наконечниками. Перед посевом образцы хорошо перемешивают, но не центрифугируют;

— Распределяют материал по поверхности питательной среды несколькими вертикальными, а затем перпендикулярными им горизонтальными штрихами, отстоящими друг от друга на небольшое расстояние.

В качестве альтернативы ее распределяют по поверхности среды шпателем Дригальского (вручную или в процессе вращения чашки Петри на платформе).

Для определения титра бактерий в моче при ее посеве несекторным методом в объеме 1, 10 и 100 мкл число колоний умножают на коэффициенты 10 3 , 10 2 и 10.

Б. Метод секторных посевов.

Метод стандартизирован для исследования объема мочи, равного 0,005 мл.

— Дно чашки Петри делят на 4 равные сектора, обозначаемые буквами А, Б, В и Г;

— Стерильной микробиологической петлей, тарированной на объем 0,005 мл, выполнить посев мочи 30-40 штрихами в секторе А;

— Прожечь петлю и провести 4 штриховых посева из сектора А в сектор Б, а затем аналогичным путем засевают остальные секторы, каждый раз прожигая петлю.

5. Методы предварительной оценки наличия бактерий в моче

5.1 Микроскопические методы исследования мочи

1. Нанести на предметное стекло 10 мкл хорошо перемешанной, но

нецентрифугированной мочи. Обвести место расположения капли маркером и высушить на воздухе.

2. Окрасить препарат по Граму стандартным методом.

3. Микроскопировать препарат при увеличении Ч1000.

Учет результатов: 1 бактериальная клетка соответствует концентрации бактерий в моче, равной 105 клеток/мл .

Слайд-планшетный центрифужный метод

Наиболее надежный метод предварительной оценки степени бактериурии: его чувствительность и специфичность при концентрации бактерий в моче 108КОЕ/мл составляют 98 и 90 %, а при концентрации 106 КОЕ/мл — 63 и 91 %, соответственно.

7. Минимальные идентификационные признаки бактерий, наиболее часто встречающихся в моче.

Для идентификации грамположительных и грамотрицательных бактерий, наиболее часто изолируемых из мочи людей, пользуются приведенными ниже идентификационными критериями. Их следует считать «минимальными», поскольку они являются основными, но не абсолютными: из-за вариабельности свойств для окончательной идентификации изолятов ряда видов бактерий требуются дополнительные тесты (биохимические, иммунологические и др.).

Грамположительные каталазопозитивные кокки, формирующие в мазках грозди.

1.1. S. Saprophyticus культуральные свойства: на CLED формирует желтые колонии, на кровяном агаре — колонии цвета слоновой кости;

— отсутствие коагулазы (тест проводят в пробирках с плазмой крови кролика в случаях, когда получены сомнительные результаты ДНК-азной пробы);

-резистентность к новобиоцину (при использовании дисков с 5 мг антибиотика зона задержки роста не превышает 16 мм).

— культуральные свойства: на CLED и кровяном агаре формирует желтые, крупные колонии (менее вариабельные по размеру, чем у коагалазонегативных стафилококков);

-положительная реакция агглютинации со специфической антисывороткой (дополнительный тест).

1.3. Другие коагулазонегативные стафилококки:

-морфология колоний: на CLED и кровяном агаре белые или желтые;

-несоответствие идентификационным критериям S. saprophyticus и S. aureus.

Грамположительные, каталозонегативные кокки, формирующие в мазках цепочки.

-морфология колоний: на кровяном агаре — серовато-белые без признаков гемолиза, с б- или в-гемолизом, на CLED — желтоватые;

— способность расти в средах с высоким (? 6,5%) содержанием NaCl;

— E. faecium в отличие от E. faecalis ферментирует арабинозу;

— пониженная чувствительность к цефалоспоринам.

— морфология колоний: на кровяном агаре — голубые или серовато-белые колонии, окруженные узкой зоной в-гемолиза, иногда вызывающие б-гемолиз или негемолитические; на CLED — мелкие, бесцветные колонии, иногда становящиеся заметными через 48 ч после посева;

— положительная реакция агглютинации со специфической антисывороткой к

стрептококкам группы В или положительный CAMP-тест;

— чувствительность к цефалоспоринам

2.3. Другие в-гемолитические стрептококки

— морфология колоний: на кровяном агаре — в-гемолиз, на CLED плохо растут;

— положительная реакция агглютинации со специфическими антисыворотками к соответствующим группам стрептококков .

— морфология колоний: на кровяном агаре — б-гемолиз, на CLED не растут или формируют мелкие колонии;

— зона задержки роста оптохином не превышает 14 мм.

Грамположительные, каталазонегативные палочки с типичной морфологией

— морфология колоний: на кровяном агаре — б-гемолиз, на CLED не растут или формируют мелкие колонии, иногда ферментирующие лактозу (пожелтение среды);

— культуральные свойства: на кровяном агаре формируют крупные сухие гемолитические колонии, сходные с колониями энтеробактерий и псевдомонад; морфология бактерий: крупные грамположительные палочки правильной формы, иногда содержат споры;

1. Corynebacterium urealyticum

— культуральные свойства: на кровяном агаре растут медленно, формируя мелкие блестящие колонии;

— резистентны ко многим антимикробным препаратам.

— культуральные свойства: на CLED растут плохо;

— морфология бактерий: часто конические, в мазках образуют скопления в форме буквы V или частокола;

Перечисленные критерии не исключают, что отвечающий им изолят не является листерией.

Грамотрицательные, оксидазонегативные палочки, ферментирующие глюкозу, растущие на среде МакКонки.

A. Энтеробактерии, ферментирующие лактозу (в средах CLED или МакКонки)

— индольный тест на кровяном агаре: положительный результат дает E. coli, отрицательный — другие энтеробактерии;

— наличие в-глюкуронидазы (определяют биохимическими тестами или в хромогенных средах типа Uriselect) подтверждает принадлежность изолята к E. coli;

— для дифференциации неэшерихиозных энтеробактерий проводят тест Фогес-Проскауера: положительный результат дают бактерии родов Klebsiella и Enterobacter, отрицательный — другие энтеробактерии;

Б. Энтеробактерии, не ферментирующие лактозу (в средах CLED или МакКонки)

— при наличие феномена роения на кровяном агаре проводят только индольный тест: положительный результат дает Proteus vulgaris, отрицательный — Proteus mirabilis;

— при отсутствии феномена роения на кровяном агаре проводят тесты Фогес-Проскауера, ONPG и индольный:

— изоляты, давшие отрицательный результат в тесте Фогес-Проскауера и положительный — в индольном тесте и ONPG, идентифицируют как E. coli (дополнительным подтверждением этого служит наличие в-глюкуронидазы);

— изоляты, давшие отрицательный результат в тестах Фогес-Проскауера и ONPG, идентифицируют на основании дополнительных биохимических исследований.

2. Неферментирующие глюкозу грамотрицательные палочки

— культуральные свойства: хороший рост на агаре МакКонки;

— наличие оксидазы, отсутствие способности ферментировать глюкозу.

Идентифицируют до рода/вида только изоляты Pseudomonas aeruginosa, Stenotrophomonas maltophilia и Acinetobater. Остальные изоляты данной группы обозначают как «грамотрицательные палочки, не относящиеся к сем. Enterobacteriaceae».

2.1. Pseudomonas aeruginosa

— культуральные свойства: способна расти при 42°С, колонии и среда окрашиваются в зелено-синий цвет и издают характерный запах (земляники, жасмина), часто проявляет феномен радужного лизиса;

— отсутствие лизин-декарбоксилазы (тест проводят с положительным и отрицательным контролями).

2.2. Stenotrophomonas (Pseudomonas) maltophilia

— особенности роста на питательных средах: колонии формируются в течение 2 дней, при росте на кровяном агаре издают запах аммиака;

— культуральные свойства: формируют выпуклые, круглые, гладкие, слизистые, полупрозрачные или мутные, непигментированные колонии; на кровяном агаре через 48 ч после посева может проявляться гемолиз;

— морфология бактерий: кокковидные палочки.

Изучив литературу и различные методики по бактериологическому исследованию мочи я сделала вывод, что можно определить ,что этот анализ имеет достаточное количество преимуществ такие как высокая специфичность метода и возможность исследовать любую биологическую жидкость и некоторые недостатки.

Пробы мочи имеют высокую диагностическую ценность, но не являются полностью универсальными, поэтому их результаты следует интерпретировать с учетом клинической картины и объективных данных. Однако простота и оперативность проведения анализов мочи позволяет применять их очень широко, в том числе для скрининговых обследований больших групп людей.

Бактериологическое исследование мочи позволяет определить количество бактерий в моче, тем самым, выявив заболевание мочевыводящих путей, так же посев мочи показывает чувствительность выявленных бактерий к антибиотикам.

Так же при изучении и сравнении питательных сред можно сказать, что во все микробиологических лабораториях пользуются тремя основными группами сред:

Эти группы сред наиболее эффективны при исследовании.

При написании курсовой работы для себя можно сделать вывод, что микробиологическая лаборатория является неотъемлемой частью медицины.

1.ГОСТ Р ИСО 15189-2006. Лаборатории медицинские. Частные требования к качеству и компетентности.

2. Набер К., Бишоп M., Бперклунд-Иохансеи Т. и соавт. Рекомендации по ведению больных с инфекциями почек, мочевых путей и мужских половых органов. Смоленск. 2008г.

3. МУК 4.2.189004. Определение чувствительности микроорганизмов к антибак- териальным препаратам.

4. Приказ Минздрава СССР от 22.04.1985 от 535 Об унификации микробиологи- ческих (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико- диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений.

5. Методики клинических лабораторных исследовании: Справочное пособие. Том 3. Клиническая микробиология. Бактериологические исследования. Миколо- гические исследования. Паразитологические исследования. Инфекционная иммунодиагностика. Молекулярные исследования в диагностике инфекцион- ных заболеваний / Под ред. В. В. Меньшикова. М.: Лабора. 2009.

6. ГОСТ Р 53079.4-2008. Технологии лабораторные медицинские. Обеспечение качества клинических лабораторных исследовании. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа.7. МУ 4.2.2039-05 Техника сбора и транспортировки биоматериалов в микробио- логические лаборатории.

Строение и функция почек, теория образования мочи. Особенности строения нефрона. Физические свойства мочи и клинико-диагностическое значение. Виды протеинурий, методы качественного и количественного определения белка в моче. Определение глюкозы в моче.

шпаргалка [87,9 K], добавлен 24.06.2010

Обзор лабораторных методов исследования мочи. Общие принципы проведения, правила ведения преаналитического этапа. Памятка пациенту для сбора мочи для анализа. Образцы направлений на исследование мочи. Характеристика различных методов исследования мочи.

курсовая работа [296,2 K], добавлен 08.04.2019

Специальные методы исследования крови и мочи животных. Условия взятия крови и мочи, сохранность до начала лабораторных исследований. Скорость оседания эритроцитов и содержания гемоглобина. Определение времени свертываемости крови по способу Бюркера.

курсовая работа [34,0 K], добавлен 31.03.2011

Мочевыделительная система человека. Образование конечной мочи. Ультрафильтрация или образование первичной мочи, избирательная реабсорбция, секреция. Химический состав клубочкового фильтрата. Нормы суточного диуреза. Патологическая окраска мочи.

презентация [3,7 M], добавлен 20.01.2015

Характеристика правил сбора и транспортирования некоторых биологических материалов в микробиологические лаборатории. Технология взятия основных видов биологического материала: крови, ликвора, желчи, мочи, ректальных мазков, мокрот с дыхательных путей.

реферат [77,9 K], добавлен 05.10.2010

Исследование мочи по общему анализу, по методу Нечипоренко, по методу Зимницкого. Алгоритм подготовки и сбора мочи для исследования. Правила подготовки пациента к лабораторным методам исследования, безопасности при сборе и транспортировке проб.

курсовая работа [39,6 K], добавлен 28.01.2015

Посев мазков из зева и носа на дифтерию. Посев первичного кала (кишечная группа). Постановка короткого пёстрого биохимического ряда. Постановка дисков на антибиотикочувствительность. Забор смывов и воздуха из операционных палат. Посев мочи на микрофлоре.

отчет по практике [31,6 K], добавлен 02.10.2012

Понятие и причины недержания мочи у женщин и мужчин. Лечение больных с недержанием мочи. Специальные физические упражнения при недержании мочи у женщин. Перечень специальных упражнений, укрепляющих мышцы живота и тазового дна (по Васильевой В.Е.).

курсовая работа [674,9 K], добавлен 17.12.2013

Понятие и предпосылки развития острой задержки мочи как патологического состояния, обусловленного скоплением мочи в мочевом пузыре вследствие невозможности самостоятельного мочеиспускания. Этиология и патогенез данного заболевания, его последствия.

презентация [170,7 K], добавлен 12.05.2015

Стрессовое, ургентное недержание мочи. Немедикаментозное лечение заболевания. Тренировка мочевого пузыря. Лечебная физическая культура для женщин с заболеванием недержания мочи. Перечень специальных упражнений, укрепляющих мышцы живота и тазового дна.

курсовая работа [981,0 K], добавлен 13.12.2013

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.

источник