Сбор мочи для исследования:
1.Общий клинический анализ:
Пациент должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом:
· воздержаться от физических нагрузок;
· лекарственных веществ, особенно влияющих на цвет мочи (амидопирин,
· фуразолидон, ибупрофен, метронидазол и т. д.), либо сообщить об их приеме врачу;
· лечь спать накануне в обычное для него время.
Наиболее информативным является анализ мочи, собранной утром после сна, так как первая утренняя порция мочи обычно самая концентрированная.
Желательно, чтобы предыдущее мочеиспускание было не позднее чем в 2 часа ночи. Допускается использование мочи, собранной не ранее чем через 2 – 3 часа после последнего мочеиспускания.
При плановом назначении анализа нужно собрать первую утреннюю порцию мочи. Мочу собирать в пластмассовый лабораторный одноразовый контейнер с крышкой на 1.00 мл. Если такого контейнера нет, мочу на общий анализ можно собрать в небольшую стеклянную баночку с крышкой, вымытую с содой (не с мылом).
Накануне исследования, утром, обследуемому необходимо провести гигиеническую процедуру (подмывание) теплой водой с мылом в переднезаднем направлении от уретры к анусу, с последующим подсушиванием салфеткой в том же направлении. После гигиенической процедуры собрать мочу следующим образом: начать мочеиспускание в унитаз на счет 1 – 2, затем задержать мочеиспускание, и наполнить контейнер или баночку. При необходимости закончить мочеиспускание в унитаз. Закрыть банку крышкой. Моча должна быть доставлена в лабораторию в течение 1 часа с момента мочеиспускания.
Не рекомендуется собирать мочу на анализ за 2 дня до менструации и через 2 – 3 дня после их окончания. При необходимости, в период менструации, перед сбором мочи на анализ, закрыть отверстие влагалища ватно-марлевым тампоном.
Мочу на анализ из судна, утки, горшка и длительно стоящего катетера брать нельзя.
Охлаждение, замораживание мочи, воздействие прямых солнечных лучей при транспортировке, доставке мочи в лабораторию – нежелательны, потому что приводят к разрушению клеточных элементов мочи и изменению ее физико-химических свойств.
Сбор мочи у детей требует особого внимания из-за возможности загрязнения мочи калом. Для сбора мочи у новорожденных используют особую емкость, не вызывающую аллергических реакций, которая закрепляется в промежности. Проверяется контейнер через каждые 10 – 15 мин.
Допустимое время хранения мочи на общий анализ – при 4 — 8˚С – до 6 часов.2.Суточный сбор мочи:
· Собирается при обычном питьевом режиме:ребенка не нужно специально дополнительно поить, либо ограничивать в питье.
· Утром после сна моча не собирается, остальные порции собираются в одну емкость, которая хранится в прохладном темном месте(например, в холодильнике, подальше от морозилки(замораживать нельзя!). есть еще специальные консерванты для хранения.
· Последняя порция собирается примерно в то же время, когда была собрана первая порция. Время начала и окончания сбора нужно указывать на бланке(во времени начала указать время первой несобранной порции). По окончании сбора мочи, измерить её объем(тоже обязательно записать на бланке), мочу тщательно взболтать и отлить 50-100 мл в отдельную посуду.
3.Порционный сбор мочи (по Зимницкому):
· Собирается при обычном питьевом режиме и режиме питания, но учитывается количество выпитой жидкости за сутки(указать на бланке).
· В 6 часов утра ребенок должен помочиться, причем эта первая порция не учитывается. затем моча собирается через каждые 3 часа в отдельные емкости, на которых указываются время сбора или номер порции, всего 8 порций. 1 порция — с 6-00 до 9-00, 2 порция — с 9-00 до 12-00, 3 порция — с 12-00 до 15-00, 4 порция — с 15-00 до 18-00, 5 порция — с 18-00 до 21-00, 6 порция — с 21-00 до 24-00, 7 порция — с 24-00 до 3-00, 8 порция — с 3-00 до 6-00 часов. Все собранное количество мочи, каждая порция в отдельной посуде, доставляется в лабораторию.
· Если в какой-либо период времени мочеиспускания не произошло( разбудили, попробовали собрать в указанные сроки, но тщетно), то банка доставляется пустой! Если вдруг мочи выделяется больше, чем может вместить в себя одна емкость, то используется несколько, но не забудьте указать на дополнительной посуде номер той же порции или время(например, за период с 9 до 12 одной банки не хватило и взяли вторую. тогда получится 2 банки №2 или надписью » 9-12). Переливать мочу из одной порции в другую также нельзя.
4.Сбор мочи для микробиологического исследования(посев, моча на стерильность):
Мочу собирают в стерильную посуду, которую получают в лаборатории. Используется моча из средней порции утреннего мочеиспускания (см. пункт 1). Доставка материала в лабораторию осуществляется в течение 1,5-2 часов после сбора. Допускается хранение мочи в холодильнике не более 3-4 часов. В случае доставки мочи в лабораторию позже указанных сроков результаты посева мочи могут быть недостоверны. СБОР МОЧИ НЕОБХОДИМО ПРОВОДИТЬ ДО НАЧАЛА АНТИБИОТИКОТЕРАПИИ.
Если ставится цель оценить эффект проведенной терапии, то посев мочи производится по окончании курса лечения.
Сбор кала для исследований
Перед исследованием не применять медикаменты, примеси которых мешают микроскопическому исследованию и влияют на внешний вид каловых масс, а также усиливают перистальтику кишечника. К таким препаратам относятся все слабительные, ваго- и симпатикотропные средства, каолин, бария сульфат, препараты висмута, железа средства, вводимые в ректальных свечах, приготовленных на жировой основе. Если у женщины в назначенное для сбора кала время имеется менструация, то получение биоматериала следует отложить до ее окончания. Нельзя собирать фекалии после клизм.
Фекалии следует брать в день исследования; опорожнять кишечник нужно в сухое судно, а не в унитаз. Собирают кал за одну дефекацию в чистую, стеклянную, сухую, герметично закрывающуюся емкость или одноразовый пластиковый контейнер с ложечкой. Для исследования нужно 5 – 10 граммов кала без примеси мочи и выделений из половых органов. Исключено использование не моющихся промокающих емкостей (спичечных коробков, например), так как при этом меняются свойства и консистенция кала.
· Для сбора анализа кала на скрытую кровь три дня пациенту запрещается употреблять продукты, в состав которых входит мясо, рыба и зеленые овощи, за сутки до сбора он не должен чистить зубы.
· Для обследования на простейшие и копрологическое исследование кала необходимо собрать свежий, из разных мест, в количестве 10 -15 граммов и желательно еще теплый кал немедленно доставить в клиническую лабораторию.
· Для паразитологического исследования кала на яйца гельминтов и цисты простейших специальной подготовки пациента к обследованию не требуется. Объем фекалий должен быть не менее 5 – 10 граммов кала. Если нет возможности отправить кал на это исследование в лабораторию сразу после дефекации, это можно сделать и позже, но не позднее 8 – 12 часов. Кал в таком случае нужно хранить в прохладном месте, при температуре + 4˚ С.
· Для выявления паразитов в кале с консервантом Турдыева, пациент трехкратно в течение трех дней (при ежедневном стуле) собирает кал в одну пластиковую емкость с консервантом Турдыева, герметично закрывающуюся, которую он получает в клинической лаборатории; при склонности к запорам интервал сбора увеличивается. Рекомендуемый однократный объем фекалий – «с горошину». Соотношение суммарного объема трехкратно собранного материала и консерванта – 1:3. Флакон с консервирующей жидкостью при добавлении очередной порции кала встряхивают до получения гомогенной взвеси. Доставляют в клиническую лабораторию с направлением на анализ.
Сбор мокроты для исследований
Мокроту лучше собирать утром до приема пищи. Чтобы предотвратить примешивание к мокроте содержимого полости рта, пациент перед выделением мокроты должен тщательно прополоскать рот и глотку кипяченой водой. Полоскание ротовой полости перед сбором мокроты уменьшает риск загрязнения пробы слюной. Затем откашляться и собрать мокроту в чистую стеклянную посуду или лабораторный одноразовый пластиковый контейнер с крышкой. Собирать следует только мокроту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании. Следует держать контейнер как можно ближе к губам и сразу же сплевывать в него мокроту по мере ее откашливания. Выделение мокроты усиливается после одного или нескольких глубоких вдохов.
Для сбора мокроты используются специальные контейнеры, которые:
· должны быть изготовлены из ударостойкого материала;
· иметь плотно завинчивающиеся или герметически закрывающиеся крышки, не допускающие просачивания жидкости;
· объем контейнеров не должен превышать 20 – 50 мл;
· иметь широкое отверстие (не менее 35 мм в диаметре);
· контейнеры должны быть изготовлены из прозрачного материала;
· материал, из которого изготовлены контейнеры, должен легко подвергаться маркировке и надежно сохранять ее на всем протяжении периода хранения, транспортировки и проведения исследования.
Доставка мокроты в клинико-диагностическую лабораторию – по возможности сразу после сбора. Охлаждение при транспортировке – нежелательно.
Дата добавления: 2015-02-16 ; просмотров: 39 | Нарушение авторских прав
источник
Кровь для клинического анализа берут у пациента из пальца или вены. Венозная кровь считается лучшим материалом для исследования.
Кровь следует брать натощак (после примерно 12 часов голодания, воздержания от приема алкоголя и курения), между 7 и 9 часами утра, при минимальной физической активности непосредственно перед взятием (в течении 20-30 мин.), в положении пациента сидя или лежа.
Для общего анализа мочу собирают утром натощак сразу после сна в сухую, чистую посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию. Мочу из судна, утки, горшка брать нельзя. Перед сбором мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов. Лежачих больных предварительно подмывают слабым раствором марганцевокислого калия.
Катетер или пункция мочевого пузыря могут быть использованы только в крайних случаях. Из длительно стоящего катетера мочу для исследования брать нельзя!
Собирают только утреннюю мочу, взятую в середине мочеиспускания, так как она более концентрированная, и с ней вымываются патологические элементы, скопившиеся в почках и мочевыводящих путях за ночь.
Исследование мочи по Нечипоренко (выявление скрытого воспалительного процесса). Собирают 50 мл утренний мочи, взятой в середине мочеиспускания.
Исследование мочи по Зимницкому (оценка концентрационной способности почек). В течении суток собирают мочу отдельными трехчасовыми порциями:
- первая порция – с 9 до 12 ч;
- 2-я – с 12 до15 ч;
- 3-я – с 15 до 18 ч.
- 4-я – с 18-до 21 ч.
- 5-я – с 21-00 до 24ч.
- 6-я – с 0 до 3 ч.
- 7-я – с 3 до 6 ч.
- 8-я – с 6 до 9 ч.
Пробу проводят в условиях обычного питьевого и пищевого режима. Отмечают количество выпитой жидкости.
Сбор суточной мочи:
Пациент собирает мочу в течение 24 часов на обычном питьевом режиме (1,5-2 л в сутки). Утром в 6-8 ч он освобождает мочевой пузырь (эту порцию выливают), а затем в течение суток собирают всю мочу в чистый широкогорлый сосуд с крышкой. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор.
Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед сливанием ее части необходимо тщательное перемешивание, чтобы осадок, содержащий форменные элементы, кристаллы, не был утрачен.
Сбор 3-х стаканной пробы:
Собирают утреннюю порцию мочи следующим образом: утром натощак после пробуждения и тщательного туалета наружных половых органов больной начинает мочиться в 1-ый сосуд, продолжает во 2-ой и заканчивает – в 3-ий. Преобладающей по объему должна быть вторая порция.
Условия хранения:
Длительное хранение мочи при комнатной температуре приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. Моча, собранная для общего анализа, может храниться не более 1,5 -2 ч (обязательно на холоду).
Обычно собирают утреннюю порцию мокроты до приема пищи, полученную путем откашливания, в чистую сухую широкогорлую склянку. Следует избегать попадания в образец слюны и секрета носоглотки.
Предварительно больной должен прополоскать рот и глотку кипяченой водой и вычистить зубы.
Желательно доставить в лабораторию и исследовать свежевыделенную мокроту. При невозможности немедленного исследования мокроту необходимо хранить в холодильнике.
Сбор кала осуществляется самим пациентом. Кал для исследования должен быть собран в чистую, сухую, широкогорлую посуду, желательно стеклянную.
Перед исследованием отменяется прием медикаментов, влияющих на секреторные процессы, а также усиливающие перистальтику кишечника.
Нельзя направлять кал на исследование после клизм, рентгенологического исследования желудка и кишечника (примесь бария); исследование кала желательно проводить не ранее,
чем через 2 суток после рентгенологического исследования.
При исследовании кала, основной целью которого, является определение функциональной способности пищеварительного тракта, необходимо в течение 4-5 дней соблюдать специальную унифицированную диету, содержащую установленное количество различных пищевых продуктов (диета Шмидта и Певзнера).
Условия хранения и доставки материала:
Кал должен быть доставлен в лабораторию и исследован не позднее, чем через 8 – 12 часов после дефекации.
Хранить до исследования необходимо на холоду при температуре 3 – 5 С (в холодильнике).
Получение эякулята и возможные погрешности при этой процедуре.
Эякулят получают путем мастурбации. Получение эякулята в условиях медицинского учреждения является предпочтительным, так как уменьшается вероятность повреждения сперматозоидов при транспортировке, бактериального загрязнения.
Не рекомендуется для получения эякулята использовать прерванный половой акт, так как может быть потеряна первая порция эякулята, в которой концентрация сперматозоидов наибольшая, кроме того, кислая среда влагалища оказывает отрицательное воздействие на подвижность сперматозоидов.
Если показано бактериологическое исследование эякулята, пациент перед получением материала должен помочится (смыть мочой содержимое мочеиспускательного канала), а затем тщательно вымыть руки и половой член.
Токсическое повреждение сперматозоидов может быть вызвано попаданием в эякулят кремов, вазелина, используемых при мастурбации; попаданием влагалищного содержимого в эякулят при прерванном половом акте.
Подготовка пациента к проведению исследования.
Эякулят должен быть получен после полового воздержания в течении не менее 2 суток и не более 7 дней. Длительные (в течение нескольких месяцев) периоды воздержания перед обследованием могут привести к нарушению процесса сперматогенеза, появлению старых, дегенеративных форм, снижению качественных параметров сперматозоидов. Несоблюдение временного интервала в половом воздержании, частые половые акты могут способствовать резкому снижению общего количества, концентрации сперматозоидов и их качественных параметров (подвижность и жизнеспособность).
Нельзя употреблять алкоголь в любых количествах в течении 6-7 дней перед исследованием. Хронические интоксикации (алкогольная, табачная, наркотическая, производственная, лекарственная и другие) закономерно приведут к снижению качественных, а иногда и количественных показателей эякулята.
Необходимо отказаться от исследования эякулята, если в течении 7-10 дней перед анализом были простудные или другие острые заболевания, протекавшие с лихорадкой. При гипертермии снижаются количественные и качественные показатели спермограммы.
Перед исследованием нужно отказаться от процедур с перегреванием (УВЧ, сауны, бани).
После массажа простаты исследование эякулята следует отложить.
Накануне сдачи эякулята необходимо исключить тяжелые физические нагрузки. Физическая усталость может привести к снижению качественных параметров сперматозоидов.
Доставка эякулята в лабораторию.
Материал должен быть собран полностью. Сразу же после получения, эякулят должен быть доставлен в лабораторию в тепле (при температуре тела). Во время транспортировки следует оберегать сперму от резких перепадов температуры. Эякулят должен быть доставлен в лабораторию в течение 1 часа после его получения.
Пациент должен сообщить врачу о том, что материал был собран не полностью (часть эякулята не попала в баночку), произошло неполное семяизвержение, эякулят был получен после длительной мастурбации (более 10 мин.).
Если у Вас нет возможности самостоятельно приехать к нам, для сдачи анализов, Вы можете воспользоваться услугой «Анализы на дому».
источник
Лабораторные исследования имеют очень большое значение не только для постановки диагноза, но и для контроля за характером течения заболевания, эффективностью лечения и оценки состояния организма. Результаты лабораторных исследований зависят от того, насколько правильно собран и доставлен в лабораторию материал. Лица, ухаживающие за больным, должны обеспечить чистоту посуды, в которую собирают мокроту, мочу, кал, грамотную подготовку больного к сбору материала и своевременную его транспортировку по назначению. На посуду должна быть наклеена этикетка, где указаны фамилия, имя, отчество больного, адрес, цель исследования и дата забора материала.
Взятие мокроты. Мокрота — патологическое отделяемое органов дыхания, выделяющаяся при кашле. Исследование мокроты помогает установить характер патологического процесса в органах дыхания, а в ряде случаев определить причины его возникновения.
Исследованию должна подвергаться по возможности свежая мокрота, полученная при утреннем откашливании. Когда мокроты вообще очень мало, ее собирают в течение нескольких часов. Для специальных методов исследования мокроту собирают в течение 1—3 сут (по назначению врача).
Больной должен сплевывать мокроту в плевательницу — сосуд из темного стекла с плотно завинчивающейся крышкой. Перед взятием мокроты на исследование плевательница должна быть вымыта с мылом, прокипячена в течение 15— 20 мин и остужена. В нее не должны попадать посторонние примеси, как, например, остатки пищи, рвотные массы и пр.; в нее не следует наливать воду.
У детей, не умеющих откашливать мокроту и заглатывающих ее, поступают следующим образом: раздражая ватным тампоном, накрученным на ручку чайной ложки, область корня языка и задней стенки глотки, вызывают кашлевой рефлекс; полученную мокроту собирают этим же тампоном и помещают в плевательницу. Так же приходится поступать с очень слабыми больными, которые не имеют силы откашлять мокроту.
Собранная для исследования утренняя мокрота должна быть доставлена в лабораторию не позднее чем через 1—1.5 ч. При этом должны быть созданы условия, исключающие ее охлаждение при транспортировке. В противном случае в мокроте быстро произойдут изменения ее качеств, состава микробных колоний, которые самым неблагоприятным образом скажутся на результатах исследования, исказив их.
По особому назначению врача в лабораторию направляется весь объем выделенной мокроты за указанное количество суток. В данном случае больных следует предупредить о необходимости сплевывать в банку всю отхаркивающуюся мокроту, а не заглатывать ее после кашля.
В ряде случаев врач предписывает вести учет суточного количества выделенной мокроты на протяжении продолжительного времени. Как правило, после утреннего туалета производят измерение объема мокроты, полученной за истекшие сутки. Для этого из плевательницы мокроту переливают в мерный стакан из светлого прозрачного стекла, фиксируют ее количество и результат заносят в специальную таблицу учета количества мокроты. С данного момента производят сбор мокроты за последующие сутки.
Использованные плевательницы нужно хорошо промывать теплой водой с моющими средствами и кипятить в течение 20 мин в 2 %-ном растворе соды. Лица, ухаживающие за больным, особенно с воспалительными заболеваниями органов дыхания, должны следить, чтобы пациенты не сплевывали мокроту на пол или в носовой платок, так как микробы, находящиеся в мокроте, поднимаются в воздух и вдыхаются окружающими, что может привести к передаче инфекции. Следует неукоснительно требовать, чтобы больной пользовался плевательницей, соблюдал противоэпидемический режим. Для обеззараживания мокроты на дно плевательницы наливают 5 %-ный раствор карболовой кислоты, 2 %-ный раствор марганцовки или 3 %-ный раствор хлорамина.
Появление в мокроте прожилок или большого количества крови указывает на легочное кровотечение, что является опасным осложнением легочных заболеваний. Увидев это, ухаживающие за больным должны немедленно сообщить об этом участковому врачу или вызвать скорую помощь.
Взятие мочи. Моча представляет собой водный и частично коллоидный раствор разнообразных органических и неорганических веществ, выделяемых почками. В ней могут находиться во взвешенном или растворенном состоянии продукты физиологического и патологического обмена веществ, форменные элементы (клетки) крови, клеточные структуры мочевыводящих путей и самих почек, различные соли в виде кристаллов (осадки), микроорганизмы и другие компоненты. В составе мочи, в ее химических свойствах отражаются не только поражение самой мочевыделительной системы, но и целый ряд заболеваний, связанных с нарушением обмена веществ, с расстройством кровообращения и прочее. Поэтому для контроля за состоянием организма, деятельностью жизненно важных систем больного, оценки эффективности лечебных мероприятий необходимо систематически следить за мочеотделением и регулярно (по назначению врача) направлять мочу на исследование в лабораторию.
Ухаживающий должен следить за количеством выделяемой мочи (в норме взрослый человек выделяет в сутки 1.2—1.4 л мочи), ее цветом (нормальная моча соломенно-желтого цвета). Особое внимание необходимо обращать на примесь крови в моче (окрашивание мочи в розоватый или красноватый цвет), что может свидетельствовать о серьезных повреждениях мочевыводящих путей, тем более если в моче плавают бесформенные сгустки кровянисто-темного цвета. Надо следить за частотой мочеиспускания (нормально человек мочится 4—6 раз в сутки) и количеством выделяемой мочи за каждое мочеиспускание.
Особое внимание следует обращать на наличие болей в области поясницы, что нередко может быть связано с развитием патологических процессов в почках.
Обо всех нарушениях, связанных с деятельностью системы мочеотделения, следует при первом же посещении врача ему сообщить. Для направления мочи на исследование необходимо иметь в виду следующее.
1) Обычно собирают утреннюю порцию мочи, являющуюся наиболее концентрированной, чем обеспечивается максимально полное представление о ее составе.
2) У мужчин мочу получают прямо в чисто вымытую бутылку, а для женщин надо приготовить какую-нибудь чистую посуду с широким горлышком, из которой затем удобно перелить мочу в бутылку.
3) Женщине перед мочеиспусканием надо сделать туалет половых органов, обмыв их ватой или марлей, смоченной теплой водой (особенно тщательно во время менструаций), и в отверстие влагалища вложить ватку, чтобы выделения из него не попали в мочу.
4) Мочу, которую направляют на анализ, нельзя долго держать в теплом помещении, так как при длительном хранении она быстро разлагается, а лучше всего, завернув бутылку с мочой в бумагу, сразу же направить в лабораторию.
У значительной части больных приходится систематически следить за суточным количеством мочи (сердечные больные, почечные больные, больные с сахарным диабетом и др.) и отмечать его в специальной карте наблюдения. Кроме того, по назначению врача для химического исследования мочи, имеющего целью разного рода количественные определения, необходимо также брать суточную мочу, так как отдельные порции могут дать значительные колебания в своем составе. Суточное количество мочи собирается следующим образом: начинают собирать мочу больного после того, как он помочился в уборной (на судно), например в 8 ч утра. После этого всю мочу в течение суток собирают в специальную, безукоризненно чистую и сухую 2—3-литровую банку с широким горлышком и крышкой. Через сутки, т. е. в 8 ч утра следующего дня, в нее больной выпускает оставшуюся в пузыре мочу. Во избежание развития брожения и гнилостных процессов банку следует хранить на холоде в закрытом виде.
Нередки случаи, когда на дому необходимо брать мочу у больных для ряда специальных исследований катетером. Эту процедуру должна выполнять во всех случаях только медицинская сестра, направленная из поликлиники, использующая для указанных целей стерильный катетер и стерильную пробку.
Взятие кала. Кал (испражнения) — содержимое нижних отделов кишечника, удаляемое при дефекации (стул, опорожнение кишечника) и состоящее главным образом из остатков пищи, не усвоенной организмом, остатков пищеварительных соков, клеток слизистой оболочки кишечника и большого количества бактериальных тел (микроорганизмов), составляющих по массе почти половину каловых масс.
Взятие кала производится всем больным для диагностики заболеваний органов пищеварения.
Лица, ухаживающие за больными в домашних условиях, должны обращать внимание на количество каловых масс, частоту стула, ставить врача в известность обо всех неблагоприятных изменениях в деятельности кишечника. Количество испражнений, выделяемых за сутки, у человека без нарушения пищеварения подвержено большим колебаниям, зависящим от количества и состава принимаемой пищи.
При смешанной пище количество испражнений составляет 100—200 г за сутки. Помимо состава пищи на суточное количество испражнений влияет состояние пищеварительной системы. Количество кала увеличивается, во-первых, при
чрезмерно быстром прохождении пищевой массы через кишечник, препятствующем достаточному всасыванию ее; во-вторых, при понижении всасывающей способности кишечной стенки; в-третьих, при повышенном проникновении жидкости в просвет кишечника при воспалительных процессах его слизистой оболочки. При тяжелых энтеритах (воспаление тонкой кишки) количество экскрементов может достигать 2500 г. При длительных запорах количество кала может оказаться непомерно малым вследствие большего, чем в норме, всасывания в кишечнике.
Частота стула в нормальных условиях не превышает одного раза в сутки, причем потребность в испражнении появляется обычно в одно и то же время суток, чаще всего по утрам.
Только в редких случаях, когда оказывается необходимым выяснение количества испражнений, выделенных за сутки, или когда имеется в виду количественное определение тех или иных составных частей испражнения (жир, крахмал, клетчатка, белок и др.), собираются все испражнения, выделенные за сутки. Для большинства исследований достаточно сравнительно небольшого (10—15 г) количества кала.
Обычно кал для исследования берут утром, после сна. Больной опорожняет кишечник в горшок (судно). Небольшое количество кала деревянной лопаточкой или шпателем кладут в чистую сухую банку с этикеткой, закрывают крышкой. В таком виде направляют кал на общее исследование.
Для исследования кала на яйца глистов или присутствие простейших амёбы, инфузории и т. д.) необходимы совершенно свежие испражнения, сохраненные до момента доставки в лабораторию в теплом виде. Помимо того что для исследования необходимо взять кал из трех разных мест всего объема испражнений, в целях высокой выявляемости глистоносительства и обсемененности простейшими сбор кала на анализ и доставку его в лабораторию следует производить неоднократно (не менее 2—3 сут подряд).
Для бактериологического исследования испражнения направляют в лабораторию в стерильной баночке или пробирке. При этом накануне в бактериологической лаборатории получают специальную стерильную пробирку с ватным тампоном, хорошо навернутым на проволоку. Больного укладывают на правый бок, левой рукой раздвигают ягодицы, правой рукой вращательными движениями осторожно вводят ватный тампон в заднепроходное отверстие, также осторожно выводят его и вставляют в пробирку, не прикасаясь к краям и стенке. При получении в лаборатории стерильной пробирки (баночки) со вставленной в нее стерильной стеклянной или деревянной палочкой (без тампона) поступают следующим образом. После дефекации больного в чистое судно из середины объема каловых масс стерильной палочкой берут кусочек испражнений массой не более 1—2 г, аккуратно помещают на дно пробирки (баночки) и плотно закрывают стерильной ватой.
Для исследования кала на примесь крови, особенно на скрытое кровотечение, больного готовят в течение 3 сут, исключая из рациона мясные и рыбные продукты, а также лекарства, содержащие йод, бром и железо. На 4-е сутки отправляют кал в лабораторию.
При упорных запорах, когда самостоятельно стула не бывает, для получения необходимого количества кала для исследования нужно проводить массаж толстой кишки. Если это не помогает, следует применить очистительную клизму. Для исследования необходимо брать плотную часть кала.
источник
Запомните! В лабораторию нельзя доставлять кал после клизм, введения свечей, приема внутрь красящих веществ, слабительных, висмута, железа, бария, белладонны.
КОПРОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
Цель:определение переваривающей способности различных отделов пищеварительного тракта.
— чистый сухой стеклянный флакон с пробкой и полоской лейкопластыря;
— деревянная лучинка или шпатель;
—по назначению врача в течение 5 дней пациент получает специальную диету (Шмидта или Певзнера);
— без специального назначения врача пациент придерживается своей обычной диеты, но запрещаются все продуктовые передачи.
Последовательность выполнения:
1.Подготовить посуду, оформить направление
2.Проинструктировать пациента о порядке сбора кала. Непосредственно после дефекации взять лучинкой из нескольких участков 5-10 г кала без примесей воды и мочи и поместить во флакон. Флакон оставить на полу в специальном ящике в санитарной комнате.
3.Собранный материал доставить в клиническую лабораторию.
4.Полученные из лаборатории результаты подклеить в историю болезни
Примечание: использованные лучины помешают в полиэтиленовый пакет, пакет следует завязать и выбросить в мусорный контейнер. Кал может быть доставлен в лабораторию не позднее 8 часов после сбора и храпения в прохладном месте.
КАЛ НА ЯЙЦА ГЕЛЬМИНТОВ
Цель: подтверждение глистной инвазии.
— чистый сухой флакон с пробкой и полоской лейкопластыря;
Последовательность выполнения:
1. Подготовить посуду и направление:
2. Попросите пациента опорожнить кишечник в судно;
3. Наденьте перчатки и шпателем возьмите кал из трех разных мест и поместите его во флакон, закройте его пробкой и заклеите полоской лейкопластыря;
4. Снимите перчатки и поместите их и шпатель в емкость с дезраствором:
5. Вымойте руки, обработайте антисептиком:
6. Отправьте материал вместе с направлением в клиническую лабораторию.
Примечание: исследование повторяют не менее трех раз.
КАЛ НА СКРЫТУЮ КРОВЬ
Цель:выявление скрытого кровотечения из органов желудочно-кишечного тракта
— чистый сухой стеклянный флакон с пробкой и полоской лейкопластыря;
— на 3 дня назначается диета, исключающая железосодержащие продукты (мясо, рыбу, помидоры, яйца, все зеленые овощи, печень, икру, гречневую кашу);
— одновременно отменяются препараты железа, висмута;
— тщательный туалет половых органов.
Последовательность выполнения:
1. Подготовить посуду и оформить направление.
2. Проинструктировать пациента в отношении диеты.
3. Испражнения собрать в горшок или судно.
4. Шпателем взять 10-20г кала из разных мест, поместить во флакон.
5. Доставить материал в клиническую лабораторию.
6. Подклеить результаты в историю болезни.
Примечание: при кровоточивости десен пациент не чистит чубы щеткой, только полощет рот раствором соды. Если пациент страдает носовым или геморроидальными кровотечениями, исследование не проводится.
КАЛ НА ПРОСТЕЙШИЕ
Цель: выявление инвазии простейших
— чистый сухой флакон и лучина (шпатель);
— если кал свежевыделенным доставить в лабораторию не представляется возможным, в посуду заранее добавляют консервант.
Последовательность выполнения:
1. Взять в клинической лаборатории флакон, содержащий консервант (I/ 2 емкости флакона).
3. Проинструктировать пациента: свежевыделенный кал с помощью лучины вносят во флакон (1/3 объема взятого консерванта). Пробка флакона закрепляется лейкопластырем, сам флакон пациент должен отдать медсестре.
4. Доставить собранный материал в клиническую лабораторию теплым, не позднее 15-20 мин. после акта дефекации
5. Полученные результаты подклеить в историю болезни
6. Исследование повторяют 5 раз с интервалом в 2 дня.
Примечание: кал доставляется теплым, так как при остывании кала простейшие теряют свою подвижность и быстро гибнут.
Дата добавления: 2016-10-27 ; просмотров: 5739 | Нарушение авторских прав
источник
Сбор мокроты
Для общего анализа мокроту собирают в чистую широкогорлую банку. Лучше собирать мокроту утром до еды, предварительно больной должен почистить зубы и прополоскать рот водой. К банке с мокротой прикрепляют направление с указанием фамилии больного, отделения и палаты, даты и цели исследования.
Для бактериологического анализа мокрота собирается в стерильную посуду (банка или чашка Петри). Больному необходимо объяснить, что во время сбора мокроты он не должен касаться краев стерильной посуды руками, ртом, а после откашливания мокроты должен сразу же закрыть ее крышкой.
Взятие кала для бактериологического исследования
Кал берут из прямой кишки стерильной проволочной петлей или ватным тампоном в стерильную пробирку с консервантом.
1. Уложить больного на бок с полусогнутыми ногами, под таз подложить клеенку
2. Достать из пробирки проволочную петлю и вращательными движениями ввести ее в прямую кишку на 9-10 см, стараясь снять со стенки кишки кусочек ее содержимого
3. Опустить петлю в пробирку с консервантом
4. Написать направление и доставить пробирку в лабораторию
Сбор мочи для лабораторного исследования.
Чаще всего мочу берут утром сразу после сна. Предварительно больной должен обработать теплой водой наружное отверстие мочеиспускательного канала. Посуда для мочи должна быть тщательно вымыта и не содержать следов мыла.
Для общего клинического анализа мочи больной должен собрать в чистую сухую стеклянную посуду 100-200 мл утренней свежевыпущенной мочи из «средней порции». На посуду с мочой наклеивают этикетку с указанием фамилии больного, номера палаты и отделения, а также характера исследования. У женщин в период менструации мочу берут катетером.
Для подсчета количество форменных элементов и цилиндром в 1 мл мочи используют метод Нечипоренко, для чего берут утро «среднюю порцию» струи мочи.
Для бактериологического исследования мочу собирают в стерильную пробирку. Необходимо проинструктировать больного, чтобы пробирка оставалось открытой как можно меньше времени и не соприкасалась с нестерильными поверхностями. Наполнять пробирку нужно не полностью, так как через намокшую ватную пробку в нее могут проникать бактерии из окружающей среды.
Для исследования на глюкозу мочу собирают в течение суток:
1. В 6 утра больной опорожняет мочевой пузырь (эту мочу не собирают)
2. Всю выделенную в течение суток (до 6 часов следующего утра) мочу больной собирает в один сосуд
3. Медсестра измеряет общее количество мочи, затем тщательно размешивает и наливает в отдельный сосуд 100-150 мл для доставки в лабораторию
4. На этикетке, помимо обычных данных, указывается количество мочи
Проба по Зимницкому позволяет оценить дневной, ночной, суточный диурез, количество, относительную плотность мочи в каждой из порций. Мочу собирают на протяжении суток каждые 3 часа (8 порций). Больничный и питьевой режим, питание больного не изменяются.
1. Подготовить 8 банок с этикетками. На каждой из них указать порядковый номер (от 1 до 8), фамилию, инициалы больного, номер палаты и промежуток времени, за который мочу необходимо собрать в каждый из сосудов
2. В 6 ч утра больной опорожняет мочевой пузырь (эту мочу не собирают)
3. Больной последовательно собирает мочу в 8 банок (мочиться в каждый сосуд один или несколько раз, но только в течении 3 часов; если в этот интервал времени позывов к мочеиспусканию не возникает, сестра напоминает больному о необходимости опорожнить мочевой пузырь, при этом если мочи не окажется, банка останется пустой)
4. Утром следующего дня медицинская сестра или лаборант измеряет объем и относительную плотность каждой трехчасовой порции мочи.
Подготовка больного к ирригоскопии и колоноскопии, УЗИ органов брюшной полости.
Ирригоскопия — рентгенологическое исследование толстой кишки с помощью контрастной клизмы, колоноскопия — эндоскопическое исследование толстой кишки.
Методика подготовки больного к ирригоскопии и колоноскопии:
1. В течение 3 дней до исследования исключают пищу, способствующую метеоризму; назначают каши, кисели, омлеты, отварныемясные и рыбные продукты; трижды в день дают внутрь настой ромашки
2. Накануне исследования больному дают перед обедом 30 г касторового масла
3. Вечером ставят две очистительные клизмы (вопрос 7) с интервалом в один час, больной не ужинает; утром дают легкий завтрак и (за 2 часа до исследования) повторно ставят 1-2 очистительных клизмы.
При необходимости проведения экстренной колоноскопии (например при подозрении на непроходимость толстой кишки) подготовку ограничивают сифонной клизмой, через 30—60 минут после нее проводят колоноскопию.
При наличии сильного метеоризма в толстую кишку вводят газоотводную трубку:
1. Уложить больного на спину, подложить под него клеенку
2. Между ногами больного поставить судно с небольшим количеством воды
3. Смазать закругленный конец трубки вазелином
4. Ввести трубку на 20-30 см в прямую кишку (наружный конец трубки опустить в судно, т.к. вместе с газами через него могут выделяются и жидкие каловые массы)
5. Через 1 час осторожно извлечь трубку и обтереть заднепроходное отверстие салфеткой. Дольше держать трубку не стоит, т.к. могут образоваться пролежни на слизистой прямой кишки.
6. Погрузить трубку на 30 мин в антисептик.
Методика подготовки больных к УЗИ органов брюшной полости.
1. УЗИ органов брюшной полости проводится натощак.
2. Необходимо устранить газы в кишечнике, затрудняющие ультразвуковую визуализацию органов:
а) избегать продукты, вызывающие усиленное газообразование
б) прием активированного угля или карболена (по 0,5—1,0 г 3—4 раза в день) за 1-2 дня перед исследованием. Возможен прием ферментных препаратов (фестала).
в) введение газоотводной трубки непосредственно за несколько часов до исследования
Оказание первой помощи при кровохаркании и желудочно-кишечных кровотечениях.
Кровохарканье — выделение (откашливание) мокроты с кровью в виде прожилок и точечных вкраплений вследствие выхождения элементов крови через неповрежденные стенки мелких сосудов при повышенной их проницаемости и разрыве капилляров.
Легочное кровотечение — выделение (откашливание) чистой алой пенистой крови в количестве 5-50 мл и больше (малые кровотечения — до 100 мл, средние — до 500 мл, большие профузные — более 500 мл).
1. Полусидячее положение, строгий постельный режим.
2. Создать больному спокойную обстановку, запретить громко разговаривать, натуживаться, принимать горячую пищу.
3. Дать больному лоток для откашливания мокроты
4. Больной должен пить мелкими глотками холодную воду или воду со льдом.
5. Наложить на руки и ноги жгуты, чтобы пережать только вены, а не артерии (с целью уменьшения притока крови в малый круг кровообращения)
6. Немедленно известить врача
а) раствор кальция хлорида / кальция глюконата 10% — 10 мл в/в
б) раствор дицинона (этамзилата) 2,5% — 2 мл в/в или в/м
в) раствор викасола 1% — 2-5 мл в/м
г) раствор кислоты аминокапроновой 5% — 100 мл в/в капельно
д) при массивном кровотечении: фибриноген 3-4 г в/в, тромбоцитарная масса в/в капельно, эритроцитарная масса в/в капельно, плазмозаменители (реополиглюкин, полиглюкин)
8. Даже после прекращения кровотечения больной должен соблюдать строгий постельный режим и находится в положении полусидя. Кормить больного следует небольшими порциями легкоусвояемой полужидкой холодной пищи, богатой витаминами. Рекомендуется холодное питье. Острая пища и приправы запрещаются. Категорически нельзя ставить банки и горчичники.
1. Горизонтальное положение, строгий постельный режим
2. Полный покой, запретить принимать пищу и воду
3. Холод на переднюю брюшную стенку
4. Немедленно известить врача
6. Ввести необходимые ЛС (такие же, как при легочном кровотечении)
7. При кровотечениях из прямой кишки ввести в нее тампон с 10% хлористым кальцием, сделать Т-образную повязку на промежность
Последнее изменение этой страницы: 2016-04-19; Нарушение авторского права страницы
источник
НАЦИОНАЛЬНЫЙ СТАНДАРТ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
Технологии лабораторные клинические
ОБЕСПЕЧЕНИЕ КАЧЕСТВА КЛИНИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
Правила ведения преаналитического этапа
Clinical laboratory technologies. Quality assurance of clinical laboratory tests. Part 4. Rules for conducting of preanalytical stage
Цели и принципы стандартизации в Российской Федерации установлены Федеральным законом от 27 декабря 2002 г. N 184-ФЗ «О техническом регулировании», а правила применения национальных стандартов Российской Федерации — ГОСТ Р 1.0-2004 «Стандартизация в Российской Федерации. Основные положения»
Сведения о стандарте
1 РАЗРАБОТАН Лабораторией проблем клинико-лабораторной диагностики Московской медицинской академии им. И.М.Сеченова Росздрава, кафедрой биохимии Российской медицинской академии последипломного образования Росздрава
2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 466 «Медицинские технологии»
4 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ
Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодно издаваемом информационном указателе «Национальные стандарты», а текст изменений и поправок — в ежемесячно издаваемых информационных указателях «Национальные стандарты». В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячно издаваемом информационном указателе «Национальные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет
Настоящий стандарт устанавливает требования к условиям и процедурам ведения преаналитического этапа клинических лабораторных исследований с целью исключения или ограничения влияния эндогенных, экзогенных, ятрогенных и иных факторов, мешающих правильному отражению состояния внутренней среды обследуемых пациентов в результатах клинических лабораторных исследований.
Настоящий стандарт может использоваться всеми организациями, учреждениями и предприятиями, а также индивидуальными предпринимателями, деятельность которых связана с оказанием медицинской помощи.
В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие национальные стандарты:
ГОСТ Р ИСО 15189-2006 Лаборатории медицинские. Специальные требования к качеству и компетентности
ГОСТ Р ИСО 15190-2007* Лаборатории медицинские. Требования к безопасности
_______________
* Вероятно ошибка оригинала. Следует читать ГОСТ Р 52905-2007 (ИСО 15190:2003) Лаборатории медицинские. Требования к безопасности, здесь и далее по тексту. — Примечание изготовителя базы данных.
Примечание — При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодно издаваемому информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по соответствующим ежемесячно издаваемым информационным указателям, опубликованным в текущем году. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.
Достоверность отражения в результатах лабораторных исследований состояния внутренней среды пациента, содержания искомых компонентов биологических материалов в значительной степени зависит от условий, в которых пациент находился в период, предшествовавший взятию у него образца биоматериала, от условий и процедур взятия образца, его первичной обработки и транспортирования в лабораторию, то есть от факторов преаналитического этапа клинического лабораторного исследования.
С целью исключения или ограничения влияния внелабораторных факторов преаналитического этапа на результаты лабораторных исследований настоящий стандарт регламентирует:
а) условия периода, предшествующего взятию у пациента образца биологического материала (приложение А);
б) условия и процедуры взятия образца биологического материала у пациента;
в) процедуры первичной обработки образца биологического материала;
г) условия хранения и транспортирования образцов биоматериалов в клинико-диагностические лаборатории.
Требования стандарта основаны на:
а) научных данных о постоянных и переменных факторах физического, химического и биологического характера, способных оказать влияние на содержание веществ и клеток в биологических материалах пациентов;
б) обобщенных данных о стабильности компонентов в образцах биологических материалов после их взятия при различных условиях хранения (приложения Б, В, Г);
в) обобщенных данных о влиянии принимаемых пациентом лекарственных средств на результаты лабораторных исследований (приложение Д);
г) требованиях ГОСТ Р ИСО 15189 (раздел 5.4).
Правила предназначены для обеспечения такого качества ведения преаналитического этапа клинических лабораторных исследований, которое необходимо для получения их результатов, достоверно отражающих состояние внутренней среды обследуемых пациентов в момент обследования, путем:
— правильной подготовки пациентов к проведению лабораторных тестов;
— информирования пациентов о требуемых ограничениях в диете, физической активности, курении, о правилах сбора биологических материалов, которые обычно собирает сам пациент (моча, кал);
— инструктирования персонала, участвующего во взятии образцов биологических материалов у пациентов, об особенностях процедур взятия различных видов этих материалов;
— рациональной организации процесса взятия образцов биоматериалов;
— полноценного обеспечения процедур взятия образцов биоматериалов необходимыми инструментами, посудой, средствами первичной обработки и транспортировки.
Принимая во внимание потенциальную биоопасность образцов биологического материала, получаемого от пациентов, персонал, выполняющий эти функции, должен быть информирован и обучен правилам безопасного взятия образцов и должен располагать средствами защиты (перчатки, устройства для безопасного сбора использованных игл и т.п.) в соответствии с требованиями ГОСТ Р ИСО 15190.
Настоящие правила содержат общие положения, которые по отношению к отдельным биологическим материалам и отдельным изучаемым в них аналитам, биологическим объектам могут требовать особых условий и процедур, что должно быть отражено в нормативных документах по технологиям оказания соответствующих простых или комплексных медицинских услуг, применительно к функциям различных категорий клинического персонала.
На основании этих общих правил в каждой медицинской организации следует разрабатывать и вводить для обязательного исполнения внутренние правила ведения преаналитического этапа применительно к каждому виду исследований, выполняемых в лаборатории, учитывающие особенности медицинского профиля и организационной формы учреждения. В случае выполнения исследований в лаборатории другого учреждения правила ведения преаналитического этапа, включая условия транспортирования образцов, применительно к этим исследованиям следует согласовывать с руководителем лаборатории, выполняющей эти исследования. Наличие и исполнение персоналом правил ведения преаналитического этапа лабораторных исследований является одним из обязательных условий при сертификации процессов выполнения исследований в клинико-диагностической лаборатории.
Взятие образца или пробы — это процесс изъятия или образования проб, охарактеризованный процедурой их взятия, то есть оперативными требованиями и/или инструкциями для отбора, изъятия и подготовки одной или нескольких проб из инспектируемого лота для выяснения характеристик этого лота (в лабораторной медицине инспектируемый лот — это обследуемый пациент, а образцы или пробы — это порции того или иного биологического материала).
3.2.1 Биологический материал — кровь
Большая часть клинических лабораторных исследований проводится в образцах крови: венозной, артериальной или капиллярной. Венозная кровь — лучший материал для определения гематологических, биохимических, гормональных, серологических и иммунологических показателей.
Для исследования аналитов в цельной крови, сыворотке или плазме образец крови берут чаще всего из локтевой вены. Показания для взятия крови из пальца на клиническое исследование крови:
— при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;
— при наличии у пациента очень мелких вен или когда они труднодоступны;
— при выраженном ожирении пациента;
— при установленной склонности к венозному тромбозу;
— у новорожденных.
При взятии образца крови из венозного или артериального катетера, через который проводилось вливание инфузионного раствора, катетер следует предварительно промыть изотоническим солевым раствором в объеме, соответствующем объему катетера, и отбросить первые 5 мл (миллилитров) взятой из катетера крови. Недостаточное промывание катетера может привести к загрязнению образца крови препаратами, вводившимися через катетер. Из катетеров, обработанных гепарином, нельзя брать образцы крови для исследований системы свертывания крови.
В зависимости от назначенного вида исследования образец крови должен собираться при наличии строго определенных добавок [1]. Для получения плазмы кровь собирают с добавлением антикоагулянтов: этилендиаминтетрауксусной кислоты, цитрата, оксалата, гепарина [2]. Для исследований системы свертывания крови применяется только цитратная плазма (в точном соотношении одной части 3,8%-ного (0,129 моль/л) раствора цитрата натрия и девяти частей крови). В большинстве гематологических исследований используют венозную кровь с солями этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА, К или К -ЭДТА). Для получения сыворотки кровь собирают без антикоагулянтов. Для исследования глюкозы кровь собирают с добавлением ингибиторов гликолиза (фтористого натрия или йодоацетата).
Для исследования ряда нестабильных гормонов (остеокальцина, кальцитонина, адренокортикотропного гормона) используют ингибитор апротинин.
Для получения из образцов крови вариантов проб для различных видов исследований рекомендуется следующая последовательность наполнения пробирок:
— кровь без добавок — для получения гемокультуры, используемой в микробиологических исследованиях;
— кровь без антикоагулянтов — для получения сыворотки, используемой при клинико-химических и серологических исследованиях;
— кровь с цитратом — для получения плазмы, используемой при коагулологических исследованиях;
— кровь с гепарином — для получения плазмы, используемой при биохимических исследованиях;
— кровь с ЭДТА — для получения цельной крови, используемой для гематологических исследований, и плазмы, используемой для некоторых клинико-химических исследований.
С целью сохранения в образце крови эритроцитов применяют смесь антикоагулянтов с добавками, например, АЦД (антикоагулянт — цитрат-декстроза или кислота-цитрат-декстроза).
Во избежание ятрогенной анемизации пациентов объем забираемой для исследований крови должен быть рационально рассчитан, исходя из того, что в конечном итоге непосредственно для анализа расходуется лишь половина от первоначально взятого объема (с учетом использования сыворотки или плазмы при гематокрите 0,5).
При использовании современных анализаторов достаточны следующие объемы образцов:
— для биохимических исследований: 4-5 мл; при использовании гепаринизированной плазмы: 3-4 мл;
— для гематологических исследований: 2-3 мл крови с ЭДТА;
— для исследований свертывающей системы: 2-3 мл цитратной крови;
— для иммуноисследований, включая исследования белков и др.: 1 мл цельной крови для 3-4 иммуноанализов;
— для исследования скорости оседания эритроцитов: 2-3 мл цитратной крови;
— для исследования газов крови: капиллярная кровь — 50 мкл (микролитров); артериальная или венозная кровь с гепарином — 1 мл.
Рационально применение пробирок для взятия крови небольшого объема (4-5 мл) при соотношении диаметра и высоты пробирки 13 на 75 мм. Использование плазмы вместо сыворотки дает увеличение на 15%-20% выхода анализируемого материала при одном и том же объеме взятой у пациента крови. Взятие венозной крови облегчается применением вакуумных пробирок. Под влиянием вакуума кровь из вены быстро поступает в пробирку, что упрощает процедуру взятия и сокращает время наложения жгута.
Для обозначения содержимого пробирок с различными добавочными компонентами применяют цветное кодирование закрывающих их пробок. Так, для пробирок с антикоагулянтами лиловый цвет пробки означает наличие ЭДТА, зеленый цвет — гепарина, голубой — цитрата. Добавление в пробирку ингибиторов гликолиза (фторида, йодацетата) как одних, так и в комбинации с антикоагулянтами (гепарином, ЭДТА), кодируется пробкой серого цвета (см. таблицу 1).
Таблица 1 — Добавки в пробирках с цветным кодом
Пустая, без добавок, для сыворотки
Гематология и отдельные химические анализы в плазме
Цитрат натрия (0,105-0,129 моль/л)
Фторид натрия (2-4 мг/мл)/оксалат калия (1-3 мг/мл)
Примечание — Пробирки, содержащие кислоту-цитрат-декстрозу (АЦД, формула А и В) используют для сохранения клеток и кодируют желтым цветом.
3.2.2 Биологический материал — спинномозговая жидкость
Взятие образца спинномозговой жидкости производят в строгом соответствии с утвержденной в установленном порядке процедурой и по возможности вскоре после взятия крови для исследований в сыворотке, с результатами которых данные в спинномозговой жидкости сопоставляют.
Первые 0,5 мл и всю спинномозговую жидкость (далее — СМЖ) с примесью крови следует удалить. Рекомендуемые объемы проб СМЖ — в соответствии с таблицей 2.
Таблица 2 — Рекомендуемые объемы проб СМЖ
Супернатант, используемый для клинической химии
Пробу помещают с соблюдением правил асептики в пробирки с пробками (для микробиологических исследований — в стерильные, для цитологических и клинико-химических исследований — в свободные от частиц пыли, без ЭДТА и фторида).
3.2.3 Биологический материал — моча
В зависимости от цели исследования образцы мочи собирают либо в виде отдельных порций, либо за определенный промежуток времени. Первая утренняя порция мочи (натощак, сразу после сна) используется для общего анализа, вторая утренняя порция мочи — для количественных исследований в соотношении с выделением креатинина и для бактериологического исследования, случайная порция — для качественных или количественных клинико-химических исследований, суточная моча — для количественного определения экскреции аналитов.
Желательно использовать сосуд с широкой горловиной и крышкой, по возможности надо собирать мочу сразу в посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию. Мочу из судна, утки, горшка брать нельзя, так как даже после прополаскивания этих сосудов может сохраняться осадок фосфатов, способствующих разложению свежей мочи. Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед сливанием ее части необходимо тщательное взбалтывание, чтобы осадок, содержащий форменные элементы и кристаллы, не был утрачен.
При взятии утренней мочи (например, для общего анализа) собирают всю порцию утренней мочи (желательно, чтобы предыдущее мочеиспускание было не позже, чем в два часа ночи) в сухую, чистую, но не стерильную посуду, при свободном мочеиспускании. При сборе суточной мочи пациент собирает ее в течение 24 ч на обычном питьевом режиме [1,5-2 л (литра) в сутки]. Утром в 6-8 ч он освобождает мочевой пузырь (эту порцию мочи выливают), а затем в течение суток собирает всю мочу в чистый сосуд с широкой горловиной и плотно закрывающейся крышкой, емкостью не менее 2 л. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор (время начала и конца сбора отмечают). Если не вся моча направляется в лабораторию, то количество суточной мочи измеряют мерным цилиндром, отливают часть в чистый сосуд, в котором ее доставляют в лабораторию, и обязательно указывают объем суточной мочи.
Если для анализа требуется собрать мочу за 10-12 ч, сбор обычно проводят в ночное время: перед сном больной опорожняет мочевой пузырь и отмечает время (эту порцию мочи отбрасывают), затем больной мочится через 10-12 ч в приготовленную посуду, эту порцию мочи доставляют для исследований в лабораторию. При невозможности удержать мочеиспускание 10-12 ч, больной мочится в приготовленную посуду в несколько приемов и отмечает время последнего мочеиспускания.
При необходимости сбора мочи за два или три часа, больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция отбрасывается), отмечает время и ровно через 2 или 3 часа собирает мочу для исследования.
При проведении пробы трех сосудов (стаканов) собирают утреннюю порцию мочи следующим образом: утром натощак после пробуждения и тщательного туалета наружных половых органов больной начинает мочиться в первый сосуд, продолжает во второй и заканчивает — в третий. Преобладающей по объему должна быть вторая порция. При диагностике урологических заболеваний у женщин чаще используют пробу двух сосудов, то есть делят при мочеиспускании мочу на две части, важно, чтобы первая часть в этом случае была небольшой по объему. При проведении пробы трех сосудов у мужчин последнюю третью порцию мочи собирают после массажа предстательной железы. Все сосуды готовят предварительно, на каждом обязательно указывают номер порции.
В первую порцию собираемой за сутки мочи в зависимости от назначенного вида исследования добавляют различные консерванты: для большинства компонентов — тимол (несколько кристаллов тимола на 100 мл мочи), для глюкозы, мочевины, мочевой кислоты, калия, кальция, оксалата, цитрата — азид натрия (0,5 или 1,0 г) на все количество суточной мочи, для катехоламинов и их метаболитов, 5-гидрокси-уксусной кислоты, кальция, магния, фосфатов — соляная кислота (25 мл, что соответствует 6 моль/л на объем суточной мочи), для порфиринов, уробилиногена — карбонат натрия, 2 г на литр мочи. Возможно также применение жидкости Мюллера (10 г сульфата натрия, 25 г бихромата калия, 100 мл воды) по 5 мл на 100 мл мочи, борной кислоты по 3-4 гранулы на 100 мл мочи, ледяной уксусной кислоты по 5 мл на все количество суточной мочи, бензоата или фторида натрия по 5 г на все количество суточной мочи. Несколько миллилитров толуола добавляют в сосуд с мочой так, чтобы он тонким слоем покрывал всю поверхность мочи; это дает хороший бактериостатический эффект и не мешает химическим анализам, но вызывает легкую мутность. Формалин, добавленный из расчета приблизительно 3-4 капли на 100 мл мочи, задерживает рост бактерий, хорошо сохраняет клеточные элементы, но мешает при некоторых химических определениях (сахар, индикан). Хлороформ, добавляемый из расчета 2-3 мл хлороформной воды (5 мл хлороформа на 1 л воды) на 100 мл мочи, проявляет недостаточный эффект консервирования, а также неблагоприятно влияет на результаты исследования осадка мочи (изменение клеток) и результаты некоторых химических исследований.
3.2.4 Биологический материал — слюна
Слюну, представляющую собой либо продукт только одной железы, либо смесь секретов нескольких желез, допускается использовать для исследования ряда гормонов и лекарственных веществ, в том числе для лекарственного мониторинга. Сбор слюны может осуществляться с помощью устройств (тампонов, шариков), состоящих из различных абсорбирующих материалов (хлопка, вискозы, полимеров).
3.2.5 Биологический материал — кал
Кал для исследования должен быть собран в чистую сухую посуду с широкой горловиной, желательно стеклянную (не следует собирать кал в баночки и флаконы с узким горлом, а также в коробочки, спичечные коробки, бумагу и т.д.). Следует избегать примеси к испражнениям мочи, выделений из половых органов и других веществ, в том числе лекарств. Если для какого-либо химического определения (например, уробилиногена) нужно точно знать количество выделенного кала, то посуду, в которую собирают испражнения, нужно предварительно взвесить.
При взятии образцов для бактериологических исследований особенное внимание должно быть уделено предотвращению загрязнения. Содержимое абсцесса следует набирать через кожу, если это возможно, поскольку ее легче дезинфицировать, чем слизистые оболочки. Жидкий материал предпочтительнее образцов на тампонах. Секрет, содержащий интерферирующие вторичные микроорганизмы, должен быть удален с поверхности открытой раны, затем образец собирают бактериологическим тампоном круговыми вращательными движениями от центра к периферии раны. Объем пробы должен быть насколько возможно большим. Образцы для культуры крови, если возможно, следует собирать в период повышения температуры тела. При подозрении на инфекционный эндокардит следует брать не менее десяти культур крови.
Образцы для выделения и идентификации вирусов обычно собирают немедленно после появления симптомов (если возможно — в первые три дня). Для анализа используют образцы на тампонах (из носа, гортани, глаз), смывы из глотки, жидкость из пузырьков при кожных поражениях, кал, мочу и спинномозговую жидкость.
При взятии кожных образцов для микологических исследований соскобы с зон активного поражения берут с помощью скальпеля после тщательной дезинфекции участка кожи. При отложениях на волосах их образцы берут с помощью эпиляционной пипетки или остригают. При поражении ногтей берут их срезы и соскобы с нижней части ногтей. Для обнаружения дрожжей в моче используют случайный образец мочи, для детекции дрожжей или грибков в мокроте предпочтительнее использовать ее утренний образец.
При диагностике паразитарных заболеваний исследуют кровь (для обнаружения плазмодиев, трипаносомы, лейшмании, микрофилярии), кал (для обнаружения лямблии, гельминтов), образцы тканей пораженных органов (для обнаружения Trichinella spiralis larvae, Echinococcus) или самих паразитов (артроподы: клещи, насекомые), мочу (при мочеполовом шистозомозе). ПЦР-анализ может быть проведен в образцах: крови с ЭДТУК и цитратом, высушенной крови (на фильтровальной бумаге), костного мозга, мокроты, жидкости из полости рта, бронхиальной лаважной жидкости, спинномозговой жидкости, мочи, кала, биопсийного материала, культуре клеток, фиксированной или покрытой (парафинированной) ткани и т.д. Важным условием получения достоверных результатов является предотвращение загрязнения образцов экзогенной дезоксирибонуклеиновой кислотой (ДНК), обычными источниками которой являются волосы и кожа людей, дверные ручки, лабораторная мебель, порошки, реагенты, термоциклер и наконечники пипеток. Идеальным средством создания чистой беспылевой среды служат настольные шкафы с ламинарным потоком профильтрованного воздуха. Взятие образцов для молекулярно-биологических исследований лучше всего проводить в закрытые одноразовые системы, которые должны быть свободны от нуклеаз, для чего подвергаются автоклавированию в токе горячего воздуха. При использовании незакрытых систем для взятия проб следует, по меньшей мере, надевать одноразовые перчатки. Стеклянная посуда должна обрабатываться 1%-ным раствором диэтилпирокарбоната, который тормозит РНКазы. Оставшийся препарат следует тщательно удалить путем автоклавировения посуды и последующей ее обработки жаром при температуре 250 °С в течение 4 ч.
3.4.1 Правила оформления направления на лабораторные исследования
Заявки на анализы должны быть согласованы со всеми врачами-специалистами, участвующими в лечении больного, чтобы при венепункции взять материал для всех необходимых исследований и не повторять процедуру. Медицинская сестра должна собрать все заявки данного пациента и дать суммарную заявку на анализы (применительно только к стационару). Если пациент будет переведен в другое отделение, то она также должна предупредить лабораторию об этом, чтобы результаты исследований были направлены в нужное отделение и не утеряны.
В направлении на лабораторные исследования (заявке) должны быть отображены следующие данные:
— дата и время назначения;
— дата и время взятия крови (сбора биологического материала);
— фамилия и инициалы пациента;
— отделение, номер истории болезни, номер палаты;
— возраст, пол;
— диагноз;
— время приема последней дозы препаратов, способных повлиять на результата анализа;
— фамилия и инициалы лечащего врача, назначившего исследование;
— перечень необходимых исследований;
— подпись специалиста, проводившего взятие крови или другого биологического материала.
3.4.2 Правила первичной обработки образца биоматериала
Важнейшей процедурой первичной обработки образцов биоматериалов после взятия их у пациентов является их кодирование с целью последующей надежной их идентификации. Кодирование видов образцов по характеру внесенных в них добавок закреплено с помощью разного цвета крышек пробирок, содержащих соответствующие добавки: красный/белый — без добавок, для сыворотки, клинико-химические исследования, серология; зеленый — гепарин, для плазмы, клинико-химические исследования; фиолетовый — ЭДТА, для плазмы, гематологические исследования; голубой — цитрат натрия, для коагулологических исследований; серый — фторид натрия, для исследования глюкозы, лактата. Идентификация образцов от определенных пациентов наиболее рациональна с помощью штрих-кодов, в которых отражены идентификационные признаки пациентов: фамилия, клиническое отделение, фамилия лечащего врача и т.п. Штрих-коды изготавливают в месте взятия образца (при доставке проб из другой лаборатории маркировку допускается проводить в лаборатории, выполняющей анализ) и считывают с помощью специального устройства в клинической лаборатории. В небольших учреждениях возможно ручное кодирование пробирок нанесением на них карандашом по стеклу или фломастером условных знаков, цифр.
Другие процедуры первичной обработки образцов биоматериалов по месту их взятия зависят от общей организации лабораторного обеспечения в данном учреждении. Если процедурные кабинеты расположены в том же здании, что и лаборатория, то контейнеры с образцами следует как можно скорее доставлять в лабораторию, где и будут осуществляться все дальнейшие действия.
Пробы, содержащие инфекционные агенты, следует обрабатывать иначе, чем пробы с относительно небольшим риском инфицирования (подобно большинству проб крови, сыворотки, мочи, кала, тампонам, мазкам и фильтровальным бумажкам).
3.4.2.1 Биологический материал — кровь
При необходимости более длительного транспортирования в лабораторию образцы свернувшейся крови (обычно свертывание происходит в течение 30 мин), предназначенные для получения сыворотки, должны быть отцентрифугированы на месте не позднее, чем через 1 ч после взятия образца. Кровь для получения сыворотки или плазмы центрифугируют в течение 10-15 мин при ускорении 1000-1200 g (оборотов в минуту). Цитратную плазму для исследований системы свертывания крови центрифугируют в течение 15 мин при 2000 g; для получения плазмы, свободной от тромбоцитов, центрифугирование длится 15-30 мин при 2000-3000 g. Центрифугирование пробирок с капиллярной кровью выполняется при 6000-15000 g в течение 90 с. Обычно центрифугирование проводят при температуре 20 °С — 22 °С. Для отдельных аналитов может требоваться центрифугирование при температуре 4 °С, 6 °С. Мазки крови для дифференциального подсчета лейкоцитов должны быть подготовлены не позднее, чем через 3 ч после взятия образца.
Поскольку нуклеиновые кислоты быстро распадаются, образцы для молекулярно-биологических исследований следует быстро подвергать стабилизации путем инактивации ДНКаз и РНКаз с помощью хаотропных веществ (гуанидин-изотиоцианат — ГИТЦ) и органического растворителя, например, фенола. Конечная концентрация ГИТЦ в стабилизированной пробе должна быть не ниже чем 4 моль/л. Стабилизированный таким способом материал не должен охлаждаться во избежание кристаллизации ГИТЦ. Кровь с ЭДТА для экстракции ДНК из лейкоцитов не требует стабилизации.
3.4.2.2 Биологический материал — кал
Вегетативные формы паразитов можно обнаружить только в свежих образцах кала в течение 40 мин после испражнения при условии его хранения при температуре 4 °С. Цисты стабильны. Для концентрации паразитов и их сохранения в образцах кала обычно применяют растворы мертиолят-йод-формалин и ацетат натрия-формалин.
3.5 Требования к условиям хранения и транспортирования образцов биоматериалов в клиническую лабораторию
Условия хранения образцов биоматериалов, взятых у пациентов, определяются стабильностью в этих условиях искомых аналитов. Максимально допускаемая нестабильность, выраженная в процентном отклонении результата после хранения от исходного уровня, не должна превышать половины размера общей ошибки определения, рассчитываемой из суммы биологической и аналитической вариации данного аналита. Максимально допускаемое время хранения измеряется периодом времени, в течение которого в 95% образцов содержание аналита сохраняется на исходном уровне.
Стабильность аналитов в различных видах образцов (крови, мочи, спинномозговой жидкости) и проб (сыворотке, плазме, осадке, мазке крови) неодинакова [2] (см. приложения Б, В, Г). Данные о стабильности проб следует учитывать и при их хранении после поступления в лабораторию. В отношении аналитов, нестабильных на свету, должны быть соблюдены соответствующие предосторожности (сбор материала в темную посуду, защита образца от прямого света).
3.5.1 Биологический материал — кровь
Содержание электролитов, субстратов, некоторых ферментов может не изменяться при хранении образцов сыворотки крови при температуре холодильника 4 °С в течение до четырех дней. Гемоглобин, эритроциты стабильны в течение одного дня при хранении в закрытой пробирке. Хранение образцов плазмы крови, предназначенной для исследований свертывающей системы, в условиях комнатной температуры более 4 ч не рекомендуется.
Исследование газов крови следует проводить немедленно; при невозможности неотложного исследования — образцы в закрытых стеклянных контейнерах могут храниться в бане с ледяной водой до 2 ч.
При транспортировании в лабораторию контейнеры с образцами крови следует предохранять от тряски во избежание развития гемолиза. Температура ниже 4 °С и выше 30 °С может существенно изменить содержание в образце многих аналитов. Образцы цельной крови пересылке не подлежат.
3.5.2 Биологический материал — моча
Собранную мочу как можно быстрее доставляют в лабораторию. Длительное хранение мочи при комнатной температуре приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. Моча, собранная для общего анализа, может храниться не более 1,5-2,0 ч обязательно в холодильнике, применение консервантов нежелательно, но допускается, если между мочеиспусканием и исследованием проходит более 2 ч. Наиболее приемлемый способ сохранения мочи — охлаждение (можно хранить в холодильнике, но не замораживать). При охлаждении не разрушаются форменные элементы, но возможно влияние на результаты определения относительной плотности.
3.5.3 Биологический материал — спинномозговая жидкость
При исследовании в пределах 1 ч пробу не охлаждают. Для транспортирования проб СМЖ используют закрытые пробирки. При исследовании в пределах трех часов — хранить на льду, не замораживать, не фиксировать, не добавлять консерванты. Транспортирование следует осуществлять как можно скорее в связи с нестабильностью клеток. Для цитологических исследований следует отсылать препараты, полученные путем цитоцентрифугирования пробы СМЖ (20 мин при 180 g), которые стабильны в течение 4-6 дней при комнатной температуре. Для длительного хранения после отделения клеток с помощью центрифугирования пробу следует быстро заморозить до минус 70 °С в тщательно закупоренном полипропиленовом сосуде.
3.5.4 Доставка в лабораторию биоматериалов для микробиологического исследования
Доставка в лабораторию любого образца биоматериала, предназначаемого для микробиологического исследования, должна длиться не более двух часов после взятия материала. Даже наиболее совершенная транспортная система не может служить заменой быстрому транспортированию и немедленному исследованию образца. Требования к транспортированию и хранению бактериологических проб приведены в таблице 3. Если соблюдение этих условий не может быть обеспечено, рекомендуется инокуляция во флакон для культур крови или в гемофлакон или, например, для проб мочи, использование погружных слайдов.
Таблица 3 — Условия транспортирования и хранения образцов различных биоматериалов для бактериологических исследований
источник